叶面喷施稀土微肥对南红梨果实采后品质的影响

崔全石1,孙嘉茂1,时瑀繁1,李宏建2,王爱德1,袁 晖1*,沙守峰2*

1辽宁省果品采后生物学重点实验室·设施园艺省部共建教育部重点实验室·北方园艺设施设计与应用技术国家地方联合工程研究中心(辽宁)·沈阳农业大学园艺学院,沈阳 110161;2辽宁省果树科学研究所,辽宁熊岳 115009)

摘 要目的】通过叶面喷施稀土微肥改善南红梨果实品质,促进南红梨果皮着色,并筛选出稀土微肥叶面喷施最佳的施用浓度。【方法】采用不同浓度梯度的稀土微肥(800倍、1000倍、1200倍)与螯合稀土微肥(100倍、200倍、300倍)分别于花后70、100、130 d进行叶面喷施,蒸馏水为对照,花后145 d采收果实。贮藏0、5、10、15 d对果实内在品质指标(硬度、可溶性固形物含量、抗坏血酸含量、石细胞含量、可滴定酸含量、丙二醛含量、乙烯含量)和外观指标(色差、花青苷含量)进行测定。通过荧光定量PCR测定采后果实中花青苷合成相关基因和乙烯相关基因的表达水平。【结果】稀土微肥进行叶面喷施后能够提高南红梨果实采后品质,稀土微肥800倍处理组效果最为明显,在采后各时期品质指标均优于对照,其中,在贮藏0 d时,果实中抗坏血酸含量比对照显著提高47%,果实色差值、花青苷含量和可溶性固形物含量显著高于对照,分别是对照的3.9、4.4和1.3倍,石细胞、可滴定酸和丙二醛含量分别比对照显著降低34%、11%和19%;果皮中花青苷合成相关基因PuPALPuCHSPuCHIPuF3HPuDFRPuANSPuUFGT 表达量增加;果实硬度相比对照显著提高7.5%,乙烯合成相关基因PuACS1PuACO2PuERF2表达量降低。【结论】叶面喷施稀土微肥能够明显提高南红梨果实品质,喷施稀土微肥800倍后果实品质提高最为明显;螯合稀土微肥300倍处理后果实的品质有显著的提升,但树体在喷施后出现大量落果现象。

关键词:南红梨;果实品质;稀土微肥;花青苷;乙烯

南红梨(Pyrus ussuriensis‘Nanhong’)为南果梨(P.ussuriensis‘Nanguo’)红色芽变品种,相比南果梨具有果皮着色面积显著增加,果实花青苷含量较高、果肉细腻多汁、可溶性固形物含量高、石细胞含量低等特点[1]。由于其较高的经济效益,因此在辽宁地区的栽培面积逐年扩大,但近年来,由于土壤养分大量消耗,果园营养管理不足,树体养分失衡,致使果实整体品质逐年下滑[2]。相比于其他品种,南红梨在色泽、口感、营养成分等方面的竞争力降低,导致果实商品价格一降再降,果农收益减少。因此,提高南红梨果实品质是振兴南红梨产业的重中之重。

稀土是我国极为重要的战略资源,自20世纪70年代开始应用于农业。经历数十年的深入发展,稀土已广泛应用于现代农业、现代工业等诸多方面。稀土元素又称镧系元素,由15种镧系元素和钇元素构成[3]。有研究表明,氯化镧处理缺钙黄瓜幼苗后,幼苗根系活性明显提高[4]。稀土元素可与细胞膜上一些酶发生反应,从而影响酶功能改变膜的渗透性,促进营养物质的吸收和利用。适当浓度的La3+能够促进番红花愈伤组织中番红花素的合成[5]。水稻在生长发育过程中,适当浓度的镧元素能够提高水稻幼苗中防御性酶的活性,提高水稻的抗病性[6]。在柠檬的栽培中稀土元素也有着重要作用,研究表明,柠檬果实品质与土壤中稀土元素含量呈正相关[7]。前人研究表明,低浓度的镧元素能够促进油菜种子萌发[8]。在光照下,铕元素处理红叶石楠后,其色素含量明显增加[9]

稀土微肥是以镧、铈元素为主,包括少量镨和钕元素在内的轻稀土元素无机盐或有机盐。作为一种新型的植物生长调节剂,在农业生产中得到广泛应用。在果树上,稀土微肥能提高苹果果实产量和品质[10]。研究表明,喷施稀土后烟草叶片中的总糖、总氮和蛋白质含量都有所提高[11]。用稀土元素浸种处理后的水稻幼苗体内的还原性糖含量及过氧化酶、苯丙氨酸转氨酶、多酚氧化酶活性明显提高[6]。大豆施用稀土镧和铈可显著提高株高,并且叶片中可溶性固形物含量明显提高[12]。适当浓度的稀土微肥能够明显提高烤烟的品质并促进其生长,对质体色素和多酚类的合成和积累有着重要作用[13]

南红梨果皮的着色程度是果实外观品质的主要指标之一,直接影响着消费者的购买意愿,主要由果皮中花青苷含量决定。花青苷是一种水溶性类黄酮物质,是天然的植物色素。首先苯丙氨酸在苯丙氨酸裂解酶(PAL)等酶的催化下形成对香豆酰辅氨酶A,再由查尔酮合成酶(CHS)催化形成查尔酮,然后由查尔酮异构酶(CHⅠ)催化形成黄烷酮,再由黄烷酮-3-羟化酶(F3H)和类黄酮-3’-羟化酶(F3’H)的催化形成二氢黄酮醇,进而由二氢黄酮醇-4-还原酶(DFR)的催化生成无色花青素,经花色素合成酶(ANS)催化合成花青素,最后在类黄酮-3-O-葡糖基转移酶(UFGT)的作用下形成稳定的花青苷[14]

笔者在本研究中以南红梨为试验材料,通过不同浓度稀土微肥叶面喷施,对果实外观品质和内在品质进行测定,最终筛选出最适稀土微肥浓度,为今后探究稀土元素影响南红梨着色调控机制提供理论基础。

1 材料和方法

1.1 试验材料和处理

试验于2022年5—12月在沈阳农业大学果树发育生物学实验室和鞍山市唐家房镇农业技术推广服务站进行。所用试验材料为南红梨树。稀土微肥为内蒙古蒙邦益农生物科技有限公司的超纯稀土和稀土多元螯合肥,具体成分见表1。

表1 超纯稀土及稀土多元螯合肥成分
Table 1 Composition of ultrapure rare earth and rare earth multicomponent chelates%

超纯稀土Ultrapure rare earth w[磁酶稀土(La、Se、Pr)]≥38 w(As)≤0.000 5 w(Cd)≤0.001 w(Pb)≤0.005 w(Cl-)≤1其他Other≤0.5稀土多元螯合肥Rare earth multicomponent chelates w[磁酶稀土(La、Se、Pr)]≥38 w(氨基酸Amino acid)≥10 w(As)≤0.000 5 w(Cd)≤0.001 w(Pb)≤0.005 w(Cl-)≤1其他Other≤0.5

1.2 试验设计

试验根据稀土微肥在苹果树及其他作物的应用效果,设计6 个不同浓度梯度,具体浓度见表2。选取树龄为5 年且生长势一致的南红梨果树,每个浓度处理果树3 株,于花后70、100、130 d 进行叶面喷施。果实于花后145 d 采收,采收后测定贮藏0、5、10、15 d果实的外观指标和内在品质,并将果肉和果皮分别用液氮速冻,保存于-80 ℃冰箱备用。

表2 稀土微肥浓度
Table 2 Rare earth trace fertilizer concentration

组分Peak No.A(对照Control)BCDE F G稀土微肥浓度Rare earth trace fertilizer concentration 0超纯稀土1200×Ultrapure rare earth 1200×超纯稀土1000×Ultrapure rare earth 1000×超纯稀土800×Ultrapure rare earth 800×稀土多元螯合肥300×Rare earth multicomponent chelates 300×稀土多元螯合肥200×Rare earth multicomponent chelates 200×稀土多元螯合肥100×Rare earth multicomponent chelates 100×

1.3 果实硬度的测定

使用手持硬度计测定果实硬度。

1.4 可溶性固形物含量的测定

采用糖度计(PAL-1,ATAGO,日本)测定可溶性固形物含量。

1.5 可滴定酸含量的测定

参照阮方毅等[10]的方法测定可滴定酸含量。利用酸碱中和原理,根据下列公式计算可滴定酸含量:可滴定酸含量/%=VNaOH×0.1×K×C/(M×D)。

式中VNaOH为消耗NaOH体积(mL);K为苹果酸=0.067;C 为定容体积(mL);M 为样品质量(g);D 为提取液体积(mL)。

1.6 抗坏血酸含量的测定

参照王海佳[15]的方法稍有改进测定抗坏血酸含量。每个处理5个生物学重复,每个果实切取0.1 g果肉,迅速将其置入加有0.5 mL 6%三氯乙酸的2 mL离心管中,用玻璃棒挤压果肉,4 ℃条件下10 000 r∙min-1离心10 min;吸取0.1 mL上清液至5 mL离心管中,随后加入pH=7.5的磷酸缓冲液0.25 mL,蒸馏水1 mL,室温静置10 min;静置结束后,在上述混合液中,依次加入10%三氯乙酸、44%正磷酸、0.3% FeCl3、4%联吡啶各0.2 mL,颠倒混匀后,在40 ℃水浴锅中水浴40 min,水浴后取出待降到室温后,测定525 nm波长处吸光值,记录数值,根据下列公示计算抗坏血酸的含量。

w(抗坏血酸)/(μg∙g-1)=Y×V1/M/V2

式中Y为标曲中的Y值;V1为浸提液体积(mL);M为样品质量(g);V2为上清液体积(mL)。

1.7 乙烯生成量的测定

参照李通[16]的方法测定乙烯生成量。每个处理5个生物学重复,称取果实质量并记录,将每个果实置于密闭容器中静置1 h,然后用1 mL 注射器从密闭容器中抽取3 管气体,作为3 次技术重复。将气相色谱仪(Agilent,7890A)打开,待温度升至200 ℃且火焰打开时,将注射器中的气体迅速打入气相色谱仪中测定乙烯生成量,记录对应峰面积,并计算单位质量果实在单位时间内的乙烯生成量。色谱柱型号为HP-AL/S(Cat.No.19095P-S25,Agilent),进样口温度为180 ℃、检测器温度为120 ℃、柱箱温度为110 ℃,尾吹气和载气分别为N2、H2,流速均为40 mL∙min-1

1.8 果实光泽参数的测定

采用Minolta∙CR-400型色差仪测量果面的L*、a*、b*值,每个处理5 个生物学重复,在每个果实阳面赤道部位均匀选取四处,测量4 次,取平均值,该平均值代表当天果实表面的颜色特征。果实色泽色差值用CCⅠ(citrus color index)来评估,CCⅠ是一个综合指标,正值为红色、负值为蓝绿色,0为红色、黄色、蓝绿色的混合色,CCⅠ=1000×a*/(Lb*)。

1.9 花青苷含量的测定

参照安建平[14]的方法测定花青苷含量,取梨果实表皮用液氮速冻,研磨后称取3 g 放入10 mL离心管中,加入8 mL 提取液(95%无水乙醇+5%1.5 mol∙L-1 HCl),黑暗条件静置12 h,之后4 ℃条件下10 000 r∙min-1离心5 min,吸上清液,利用分光光度计测定波长在530 nm、620 nm 和650 nm 处的吸光值并记录。花青苷含量的计算公式:

花青苷光密度:ODλ=(A530-A620)-0.1×(A650-A620);b(花青苷)/(nmol∙g-1)=ODλλ×V/M×106

式中ξλ为4.62×104V 是提取液体积;M 是果皮质量。

1.10 丙二醛含量的测定

参照梁爽[17]的方法稍有改进测定丙二醛含量,取梨果肉用液氮速冻,研磨后取0.1 g 加入3 mL 的10%三氯乙酸(TCA),震荡20~30 min,之后4 ℃条件下12 000 r∙min-1离心10 min,取2 mL 上清液于10 mL 离心管中,加入2 mL 的0.6%硫代巴比妥酸(TBA),混匀后将离心管在沸水中水浴15 min,然后迅速置于冰中冷却,之后4 ℃条件下12 000 r∙min-1离心10 min。利用分光光度计测定波长在450 nm、532 nm 和600 nm 处的吸光值并记录。丙二醛含量计算公式:c(丙二醛)/(μmol ∙L-1)=[6.425×(A532-A600)-0.559×A450]×4×V/V1。式中:V 是提取液的体积;V1是测定提取液的体积。

1.11 石细胞含量的测定

参照张伟等[18]的方法测定石细胞含量。

1.12 基因表达分析

采用CTAB 法提取梨果实及表皮的RNA。参照反转录试剂盒(PrimeScriptTM reagent Kit with gDNA Eraser, cat.no.RR047Q,TaKaRa,Japan)说明书中提供的方法进行cDNA 合成,反转录结束后将cDNA置于-20 ℃冰箱中保存。半定量PCR初步检测各基因的表达情况,程序为:95 ℃,5 min;95 ℃,30 s;50 ℃,30 s;72 ℃,30 s,重复循环2~4 步25~30次;72 ℃,5 min;4 ℃保存。通过1%琼脂糖凝胶电泳对PCR 产物进行检测,使用凝胶成像系统(Gel-Doc XR System,Bio-Rad)检测各基因表达量。梨PuActin 作内参基因。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物序列见表3。使用实时荧光定量(qRT-PCR)PCR 定量检测各基因相对表达量,程序为:95 ℃,10 min;95 ℃,30 s;60 ℃,30 s;72 ℃,30 s,重新返回程序第二步,共28 个循环;72 ℃,5 min;4 ℃保存。相对表达量使用△Ct 法计算:基因相对表达量=2-(目的基因Ct 值-内参基因Ct 值)。使用仪器为安捷伦实时荧光定量PCR 仪(Applied Biosystems 7500 Real-Time,USA)。

表3 试验所用引物
Table 3 Primers used in the study

基因名称Gene name PuPAL PuCHS PuCHI PuF3H PuDFR PuANS PuUFGT PuACS1 PuACO2 PuERF2 PuActin正向引物序列Forward primer sequence(5’-3’)CGGAAACCATCACCCAAAAT GGCATTTCGGACTGGAACTC ATGCAGAAGGCAAAGCCATT TGTGAGGGAGGGAGAGAAGC TCAGGATCTCGAGGCACGTA TGGCCTCAAACACCTGCTGA ATGGCACCGCCGCCGCCCACCAAAA ATGGCCTCATCTGCAAGTGAGAATCG GTTCTACAACCCAGGCAACG ATGGAAGAACAACCTCAGCACTACAC TGGTGAAGGCTGGATTTG反向引物序列Reverse primer sequence(3’-5’)CCACCGGCTTTCTGTACTCC CCCTCTCCGGTTGTTTTGAG TTGCTGGAGGAGAAACACCA ATTTCATCCGCTGGCTTGAT AGGCGGTGAGTCCTCCATTA CTCCAGCCTCCCTTCATCCA CTATGCTTTCTTGGATCCTGATATA TTAAGTCGTAGCTCGAAGGAGAGG TCTCAGAGCTCAGGCAGTTG TCAGCTAACCAATAGTTGCTCGCC CTGTGAGCAGAACTGGGTG

2 结果与分析

2.1 叶面喷施稀土微肥对南红梨果实外观品质的影响

叶面喷施稀土微肥后,在室温贮藏0 d 时,稀土1200 倍、稀土1000 倍、螯合稀土200 倍和螯合稀土100倍处理组相比于对照组没有显著差异,稀土800倍和螯合稀土300 倍处理组着色情况优于对照组;在室温贮藏5 d 时,对照组和处理组开始变黄;室温贮藏10 d 时,对照组和处理组的果实果皮的着色情况达到峰值,果实外观品质最好;室温贮藏15 d 时,处理组与对照组果实果皮彻底褪去绿色,变成黄色部分,果实开始出现腐烂现象(图1)。由图1可以看出,稀土微肥浓度在800倍时,果实着色情况最佳。

图1 稀土微肥处理对南红梨果实外在品质的影响
Fig.1 Effects of rare earth microfertilizer treatments on the exterior quality of the Nanhong fruit

随着贮藏时间增加,稀土800倍和螯合稀土300倍色差指数在贮藏10 d时达到最大,之后开始下降;而对照组和其他处理组色差指数呈现上升趋势;在各个贮藏时期,稀土800倍和螯合稀土300倍的色差指数均显著高于对照组,在0 d 时分别是对照组的2.2倍和1.8倍(图1)。

不同贮藏时间均以稀土800倍的处理组中花青苷含量最高;在贮藏0 d 时,处理组整体的花青苷含量显著高于对照组,稀土800 倍处理组花青苷含量是对照组的4.4倍;贮藏5 d时,不同处理花青苷含量均上升,螯合稀土100 倍处理组花青苷含量显著低于对照组12%,说明高浓度稀土元素会抑制花青苷合成;在贮藏10 d时,螯合稀土300倍、螯合稀土200倍、螯合稀土100 倍和稀土1200 倍处理组的花青苷含量下降,其他各处理组的花青苷含量上升;在贮藏15 d时,稀土800倍、螯合稀土200倍和螯合稀土100倍处理组的花青苷含量上升,其他各处理组花青苷含量下降(图1)。

2.2 叶面喷施稀土微肥对南红梨果实内在品质的影响

梨果实糖酸比及可滴定酸、可溶性固形物、石细胞、丙二醛和抗坏血酸含量变化是衡量果实内在品质是否优良的重要指标。在贮藏0 d 时,喷施稀土800倍处理组可溶性固形物含量是对照的1.3倍,且显著高于其他处理组,螯合稀土200 倍和螯合稀土100 倍处理组可溶性固形物含量显著低于对照,表明高浓度稀土微肥抑制可溶性固形物积累;在贮藏5 d 时,各处理组中可溶性固形物含量都有所上升,稀土800倍处理组的最高;在贮藏10 d时,各处理组中可溶性固形物含量到达峰值,表明南红梨贮藏10 d左右是最佳的食用时间;在贮藏15 d时,各处理组的可溶性固形物含量开始下降(图2)。

图2 稀土微肥处理对南红梨果实内在品质的影响
Fig.2 Effects of rare earth microfertilizer treatments on the internal quality of the Nanhong fruit

可滴定酸含量直接影响果实口感。贮藏0 d时,处理组可滴定酸含量低于对照,螯合稀土300倍处理组差异最为显著,下降20%;其次是稀土800倍处理组,下降11%,表明稀土微肥可降低可滴定酸含量,改善果实口感;在贮藏5 d时,各处理组中可滴定酸含量均已下降,螯合稀土300倍处理组含量最低;在贮藏10 d时,各处理组中可滴定酸含量下降程度减弱;在贮藏15 d时,各处理组中可滴定酸含量差异不显著(图2)。由图2可知,除贮藏10 d外,稀土800倍和螯合稀土300倍处理的果实糖酸比显著高于对照。

石细胞含量是评价梨果实的重要指标。贮藏0 d 时,稀土微肥处理组的石细胞含量显著下降,螯合稀土300 倍处理组下降最为显著,下降37%,其次是稀土800 倍处理组下降34%;在贮藏5 d 时,各处理组中石细胞含量呈现下降趋势;在贮藏10 d时,各处理组中石细胞含量下降幅度增加,表明贮藏10 d时石细胞降解速度加快;在贮藏15 d时,石细胞含量降至最低,表明石细胞已大部分降解(图2)。

丙二醛含量反映细胞抗氧化能力。贮藏0 d时,稀土800 倍处理组丙二醛含量显著低于对照组,下降19%,其次是螯合稀土300 倍,下降17%,螯合稀土200 倍和螯合稀土100 倍处理组丙二醛含量显著高于对照,说明喷施高浓度的稀土微肥提高果肉中丙二醛的含量;贮藏5 d 时,各组间变化趋势没有改变;贮藏10 d 和15 d 时,丙二醛含量呈现上升趋势,各组间的差异程度逐渐减小(图2)。

抗坏血酸具有抗氧化功能,是反映果实营养水平的重要指标。贮藏0 d 时,除螯合稀土100 倍处理外,各个稀土微肥处理组抗坏血酸含量显著高于对照,其中螯合稀土300 倍处理组差异最为显著,抗坏血酸含量提高52%,其次是稀土800 倍处理组,抗坏血酸含量提高47%;贮藏5 d 时,各处理组中抗坏血酸含量下降,且稀土1000 倍、稀土800 倍和螯合稀土300倍处理组抗坏血酸含量显著高于对照组;贮藏10 d时,各组中抗坏血酸含量之间差异减小,仍然是较低浓度的处理组显著高于对照;贮藏15 d时,处理组和对照之间没有显著差异(图2)。

梨属呼吸跃变型果实,呼吸跃变后果实的品质会明显下降。随着贮藏时间的增加,果实硬度整体呈现下降趋势;贮藏0 d 时,处理组硬度显著高于对照,稀土800倍和螯合稀土300倍处理组差异最为显著,提高7%;贮藏5 d 时,稀土800 倍、螯合稀土300倍和螯合稀土100倍处理组的果肉硬度显著高于对照,分别提高4.7%、7.0%和6.5%;贮藏10 d 时,稀土800 倍、螯合稀土300倍和螯合稀土200 倍处理组显著高于对照;贮藏15 d时,各处理组果肉硬度没有显著差异(图3)。

图3 稀土微肥处理对南红梨果实硬度和乙烯生成量的影响
Fig.3 Effect of rare earth microfertilizer treatment on fruit hardness and ethylene production of Nanhong

乙烯生成量是反映果实是否发生呼吸跃变的主要指标。在呼吸跃变型果实中,乙烯生成量呈现先升高后下降的变化趋势。贮藏0 d时,各处理组乙烯生成量没有显著差异;贮藏5 d 时,各处理组的乙烯生成量开始增加,稀土800 倍处理组乙烯生成量显著低于对照,降低25.0%,而螯合稀土200 倍和螯合稀土100 倍处理组乙烯生成量显著高于对照组,分别提高4.2%和8.2%;贮藏10 d 时,各组乙烯生成量均达到峰值,此时稀土微肥800倍和螯合稀土300倍处理组显著低于对照;贮藏15 d时,各组的乙烯生成量开始下降(图3)。

通过上述的试验结果,发现提高南红梨果实外观和内在品质的两个最适浓度为稀土微肥800倍和螯合稀土300 倍,但在采收时,发现喷施螯合稀土300倍处理组树体相比于对照出现果实大量脱落现象,考虑用于果树的实践生产,果实产量及果实品质会有所降低,没有实用性(图4)。因此,确定最适浓度为稀土800倍。

图4 螯合稀土300 倍处理对南红梨果实的影响
Fig.4 Effect of 300×chelated rare earth treatment on the fruit of Nanhong

2.3 稀土微肥叶面喷施对南红梨果实花青苷合成及响应相关基因表达的影响

稀土800倍处理组中南红梨果皮花青苷含量在贮藏的各个时期均显著高于对照,为阐明稀土微肥处理对果实着色的影响机制,因此选取着色最优的处理组稀土微肥800倍进行定量分析。通过分析花青苷合成途径中主要的结构基因,选取PuPALPuCHSPuCHIPuF3HPuDFRPuANSPuUFGT 进行定量分析。贮藏0 d时,处理组PuPALPuCHSPuF3HPuDFRPuANSPuUFGT表达量分别高于对照1.2倍、1.6倍、2.3倍、1.6倍、2.0倍和2.2倍,PuCHI基因表达量没有显著差异;贮藏5 d时,处理组PuCHIPuDFRPuANS相对表达量到达峰值,之后开始下降,PuPALPuCHSPuUFGT表达量没有显著变化;在贮藏10 d时,PuF3H相对表达量达到峰值,之后开始下降;贮藏15 d时PuUFGT表达量达到最大(图5)。

图5 稀土微肥处理对花青苷合成相关基因表达量的影响
Fig.5 Effects of rare earth microfertilizer treatments on gene expression of anthocyanin synthesis and regulation

2.4 稀土微肥叶面喷施对南红梨果实乙烯相关基因表达的影响

果实乙烯生成量是影响果实贮藏性的关键指标,ACS 是乙烯合成的限速酶;ACO 是催化植物合成乙烯的关键酶;乙烯响应因子ERF家族在植物乙烯合成过程中发挥着重要作用。稀土微肥800倍处理后果实乙烯生成量下降,因此,对贮藏各时期果实中PuACS1PuACO2PuEFR2 表 达 水 平 进 行 测定。由图6可知,稀土微肥处理后,果实中PuACS1PuACO2PuEFR2基因的表达水平在贮藏0 d没有显著差异;贮藏5 d 时各基因的表达量开始增加,处理组贮藏10 d 时,果肉中PuACS1PuACO2Pu-EFR2 表达量达到最高;处理组在贮藏5、10 和15 d时乙烯合成相关基因表达量显著低于对照,导致果实乙烯生成量受到抑制。

图6 稀土微肥处理对乙烯合成及响应相关基因表达量的影响
Fig.6 Effects of rare earth micro fertilizer treatments on gene expression associated with ethylene synthesis and response

3 讨 论

南红梨是南果梨的红色芽变品种,其果皮着色面积是南果梨的4 倍以上。经历20 多年的发展,虽然南红梨的产量正在稳步提升,但果实品质却参差不齐,受到陈旧的栽培制度和果园管理制度、树体老化、品种退化和气候异变等诸多因素的影响,加之果园的机械化水平较低,劳动力成本居高不下,更加剧南红梨果实品质下降[19]

南红梨属于典型的红皮梨品种,果皮呈现鲜红色,外观品质明显优于南果梨。有研究表明,苹果上施用稀土微肥可明显提高单果质量和果实产量[20]。稀土元素能调节银杏细胞中的叶绿素荧光酶和抗氧化酶诱导类黄酮化合物的合成,进而影响银杏叶片的颜色[21]。在纽荷尔脐橙品质的研究中,发现纽荷尔脐橙果皮的亮度和着色度与土壤中稀土元素含量呈正相关[22]。在草莓生产中,喷施适当浓度的La3+能够明显提高草莓果实的色泽指数[23]。笔者通过本研究发现,在表型图中稀土微肥800倍处理组,对提高南红梨果实着色的作用最为明显,色泽指数是对照组的2.2倍。前人研究表明,稀土元素对作物的影响有着两面性,适当的浓度范围对植物有着正面效应,能够促进作物生长,提高抗逆性。当稀土元素的浓度超出植物的承受范围时,其对作物会呈现出负面影响,主要表现为诱导植物产生氧化胁迫和毒害现象[24]。笔者在本试验中,发现随着稀土微肥浓度的增大,果实着色程度呈现出先上升后下降的变化趋势,螯合稀土300倍处理组中,果树叶片出现烧叶和落果现象,与前人的研究相似。研究表明,在光照条件下,稀土元素处理后红叶石楠的色素含量明显提高,苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性显著提高,进而促进多酚和原花青素合成[9]。之前的报道中提到,稀土元素调节植物次生代谢合成的相关机制是由于镧和铕元素与钙性质和结构相似,又被称作“超级钙”,可以优先结合细胞壁上的钙离子转运蛋白,进而提高细胞对营养成分的吸收,间接促进PAL 等的酶活性,促进花青素的积累[25]。在黄芩生长土壤的研究中,发现细胞内黄酮类化合物积累与根系土壤中稀土元素含量显著相关[26]。笔者在本试验中,测定稀土微肥800倍处理后花青素合成相关基因的表达情况,花青苷合成相关基因表达水平均显著高于对照,如PuCHSPuDFRPuANS。因此,推测稀土微肥处理后果皮中花青苷含量上升与稀土元素参与细胞中钙离子的转运过程有关,进而影响类黄酮物质合成,最终调节花青素合成。

梨果实内在品质体现梨果实的商业价值。有研究表明,稀土元素促进作物根系生长,提高根系对水及营养物质的吸收能力。在银杏幼苗研究中,发现在50 mg∙L-1稀土溶液处理银杏幼苗后,相比于对照其可溶性糖含量提高33%[21]。在草莓的生产中,施用适当浓度的镧元素可明显提高果实中可溶性固形物含量[23]。笔者在本试验中发现,南红梨果实中可溶性固形物含量在一定范围内随着稀土微肥浓度的增加而逐渐增加,浓度为800 倍时可溶性固形物含量达到峰值,然后随着浓度增大而下降,与前人研究中出现低促高抑的变化趋势相符。丙二醛(MDA)是细胞中膜脂过氧化的最终产物,是反映膜损伤程度和作物抗逆性的重要指标。有研究表明,在鸭梨栽培过程中施用稀土微肥能够显著减少病果量;稀土微肥应用于葡萄可以显著减少缺铁病的发生,减少白粉病和炭疽病发生[27]。利用适当浓度的稀土微肥浸泡薏苡种子,发芽后幼苗中超氧化物歧化酶活性提高,显著降低膜脂过氧化水平[28]。在本试验中,在贮藏0 d 时,稀土微肥800 倍处理组和螯合稀土300倍处理组中MDA含量显著低于对照,表明适当浓度稀土微肥可以提高果实的抗逆性,而高浓度螯合稀土微肥处理组MDA 含量显著高于对照组,一定程度反映出稀土元素对作物的毒害作用。可滴定酸含量是反映果实食用口感的重要指标。有研究表明,沙田柚施用适量的稀土可以起到增糖减酸的作用[29]。在本试验中,稀土微肥可以降低果实中可滴定酸的含量,改善果实口感。石细胞是梨中特有性状,含量过高会使得果实口感粗糙,严重影响果实食用性[30]。在前人的报道中,外源钙处理砀山酥梨愈伤组织后,显著降低果实中木质素合成相关基因表达量,抑制石细胞合成[31]。在本试验中,贮藏0~5 d时,稀土微肥处理组中石细胞含量显著下降,其中稀土微肥800 倍和螯合稀土300 倍处理组效果最为明显,与前人结果相似。果实中抗坏血酸含量是衡量果实营养水平的重要指标,在植物中作为一种重要的抗氧化剂在协助抵抗高温等逆境中有着重要作用。前人研究表明,大田栽培菠萝施用适当稀土元素后,果实中抗坏血酸含量明显提高[32]。在桃果实品质研究中,发现果实中抗氧化能力和糖与土壤中稀土元素含量呈正相关[33]。笔者在本试验中发现果实中抗坏血酸含量在螯合稀土微肥300倍处理组中达到峰值,与前人的研究相符。当稀土浓度高于此临界值时,开始出现抑制作用,果实中抗坏血酸含量降低。

果实后熟过程是果实采后贮藏阶段发生的一系列复杂反应。梨作为一种呼吸跃变型果实,采后会出现明显呼吸作用骤然升高的现象,并伴随着乙烯的大量生成,在这一过程中果实中的营养成分消耗增加。有研究表明,稀土配合1-MCP处理鲜切富士苹果后,能够明显抑制乙烯生成量和果实的呼吸速率,果实硬度下降速率减慢,果实保质期明显延长[34]。在杧果生产中,叶面喷施钙肥后,果实乙烯生成量减少,跃变峰推迟,杧果果实贮藏性明显提高[35]。对木瓜喷施适当浓度的氯化钙后,果实硬度显著提高,延缓果实硬度下降速率,果实乙烯生成量显著下降,果实耐贮性显著提高[36]。在网纹甜瓜生产中施用钙肥可显著提高果实硬度[37]。在本试验中,稀土微肥800 倍处理组南红梨果实硬度在贮藏0~10 d时显著高于对照,而乙烯生成量在贮藏5~10 d时显著低于对照,与前人研究相似。由于稀土元素中镧元素与钙的结构相似,推测稀土元素对果实贮藏性的影响机制类似钙的作用机制。

4 结 论

叶面喷施稀土微肥800倍显著提高南红梨采收时的果实硬度、可溶性固形物和抗坏血酸含量,显著上调花青苷合成相关基因PuPALPuCHSPuF3HPuDFRPuANSPuUFGT 表达水平,提高果皮中花青苷含量;可滴定酸、石细胞、丙二醛含量和乙烯生成量显著下降,乙烯合成相关基因PuACS1PuACO2PuEFR2 表达水平降低,推测稀土微肥中镧元素起主要作用。

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Effect of foliar spraying of rare earth micronutrient fertilizer on fruit quality of Nanhong pear

CUⅠQuanshi1,SUN Jiamao1,SHⅠYufan1,LⅠHongjian2,WANG Aide1,YUAN Hui1*,SHA Shoufeng2*

(1Key Laboratory of Fruit Postharvest Biology/State Education Ministry and Liaoning Provincial Key Laboratory of Protected Horticulture/National&Local Joint Engineering Research Center of Northern Horticultural Facilities Design&Application Technology(Liaoning)/College of Horticulture, Shenyang Agricultural University, Shenyang 110161, Liaoning, China;2Liaoning Provincial Institute of Fruit Tree Science,Xiongyue 115009,Liaoning,China)

Abstract:【Objective】The study aimed to determine the optimal foliar application concentration of rare earth micronutrient fertilizer by comparing the treatment of foliar spraying with rare earth micronutrient fertilizer and the foliar spraying with distilled water (control). Pyrus ussuriensis‘Nanhong’pear is a characteristic variety in Liaoning region.Ⅰn recent years, the fruit quality of Nanhong pear has shown a downward trend in fruit taste, flavor, and coloring.The rare earth micronutrient fertilizer is a new type of plant growth regulator with the characteristics of low dosage, low price, and obvious effects.Ⅰt is widely used in various aspects of agricultural production, however, it has not been popularly used in the production of Nanhong pear.This experiment involved the investigation of the effects of the spray of the rare earth micronutrient fertilizers on the fruit quality of Nanhong pear.【Methods】The Nanhong pear trees with consistent growth potential and growth areas were selected as experimental materials.2-3 liters of the rare earth micronutrient fertilizer were sprayed,and the fruit quality was tested.Six concentration gradients of the rare earth micronutrient fertilizer were set up, that is, 1200, 1000 and 800 times of the ultrapure rare earth micronutrient fertilizer, 300, 200, 100 times of the chelating rare earth micronutrient fertilizer.The distilled water was used as the control.The foliar sprays were done on 70, 100, and 130 days after flowering, and harvest was done on 145 days after flowering.The indicators of fruit quality were measured every 5 days after harvest,and the expression levels of anthocyanin synthesis related genes and ethylene synthesis related genes in the fruits were analyzed through fluorescence quantitative PCR detection.【Results】The fruit quality of Nanhong pear was significantly improved by the sprays of the rare earth micronutrient fertilizer,the effect of 800 times of the ultrapure rare earth micronutrient fertilizer was the most obvious, especially, and the quality indexs in each stage of postharvest were better than the control group.Among them, the ascorbate content in fruits was significantly increased by 47% compared with the control group at 0 days of storage, the color difference,anthocyanin and soluble solid contents were significantly higher than that of the control group(3.9,4.4 and 1.3 times, respectively), and the content of stone cells, titrable acid and malondialdehyde were significantly decreased by 34%,11%and 19%,respectively.The relative expression of anthocyanin synthesis-related genes PuPAL,PuCHS,PuCHI,PuF3H,PuDFR,PuANS and PuUFGT were increased in pericarp.The fruit hardness was significantly increased by 7.5%compared with the control,and the relative expression of ethylene synthesis-related genes PuACS1, PuACO2 and PuERF2 were decreased.【Conclusion】Leaf application of 800 times rare earth fertilizer significantly increased the fruit hardness,soluble solids and ascorbic acid content while Nanhong pear were harvest,the relative expression of genes related to anthocyanin synthesis were up-regulated, such as PuPAL, PuCHS, PuCHI, PuF3H, PuDFR,PuANS and PuUFGT,and increased the anthocyanin content in fruit peel.The production of titrable acid,stone cells,malondialdehyde and ethylene decreased significantly,and the relative expression of ethylene synthesis-related genes PuACS1,PuACO2 and PuEFR2 were down-regulated.

Key words:Nanhong pear;Fruit quality;Rare earth micronutrient fertilizer;Anthocyanin;Ethylene

中图分类号:S661.2

文献标志码:A

文章编号:1009-9980(2024)01-0052-13

DOⅠ:10.13925/j.cnki.gsxb.20230332

收稿日期2023-09-08

接受日期:2023-11-17

基金项目国家自然科学基金青年基金(31801834);沈阳农业大学中青年研究生导师培育项目(2022-ZZDS-12)

作者简介崔全石,男,硕士,从事南红梨品质提高研究。E-mail:15840120229@163.com

*通信作者Author for correspondence.E-mail:huiyuan@syau.edu.cn;E-mail:chssf@163.com