碳代谢和氮代谢是植物生命活动中最基础的代谢和重要生理过程[1]，植物碳氮代谢能力直接影响作物的品质和产量[2]。为提高作物碳氮代谢能力，降低干旱、盐碱、低温、水涝、病虫害等不利条件对产量和品质的影响，以及在正常生长条件下增强植物碳氮代谢能力，前人已做大量研究。研究表明，在盐胁迫条件下，可通过褪黑素提高水稻幼苗碳、氮代谢能力来提升抗性抵御环境胁迫，恢复生长力[3]。吕腾飞等[4]利用缓释氮肥与尿素配施显著提高杂交籼稻幼穗和剑叶细胞碳、氮代谢关键酶活性，进一步提高杂交稻产量。李健忠等[5]通过打顶后喷施油菜素内酯和生长素增强烟草碳氮代谢从而提高烟叶质量和产量。金正勋等[6]对水稻喷施6-BA和ABA，调控籽粒碳氮代谢相关酶基因表达从而提高稻米品质。因此，调控碳氮代谢是提高植物产量和品质的重要措施。
γ-氨基丁酸（GABA）是动植物体内一种天然存在的非蛋白组成氨基酸，是一种重要的抑制性神经递质，多数研究侧重于医药研究，能有效抑制谷氨酸的脱羧反应，提高葡萄糖磷酸酯酶的活性，具有镇静、催眠、抗惊厥、降血压的生理作用；在植物界的研究中发现，GABA是植物生长所必需的，它与碳和氮代谢密切相关，是桥接碳和氮代谢的关键因素[7-8]。植物细胞遭受胁迫时，可诱导体内谷氨酸脱羧酶（GAD）催化谷氨酸脱羧产生高于正常水平的GABA，同时消耗H+，因此认为GABA 的生成可维持细胞pH的稳定[9]。王泳超[10]和于立尧[11]的研究证明适量的外源GABA 能恢复盐胁迫和干旱条件下玉米和甜瓜幼苗的株高、根系发育以及各种生长指标，对植物形态建成具有调控作用。闫妮等[12]利用GABA浸种提高了番茄出苗率以及促进植株生长缓解盐胁迫；适度喷施GABA可恢复NaCl胁迫下西伯利亚白刺叶肉细胞光合活性[13]；降低高温、干旱胁迫下高羊茅叶绿素含量下降速度[14]；增强硝酸钙胁迫下甜瓜幼苗对NO3-·N的同化能力[15]。目前，通过施用含氮肥料来提高作物产量和品质一直是绿色革命的一个重要因素[16]，然而，在生态方面，过度施用化肥会造成灾难性的影响，例如富营养化[17]。更好地了解植物氮代谢对于提高植物产量和减少肥料过度使用至关重要[18]。GABA 可作为氮源被植株直接吸收[19]，且外源GABA 在葡萄生长发育过程中对叶片碳氮代谢的影响鲜有报道。笔者在本试验中通过对葡萄叶面GABA的喷施处理，探究外源GABA对葡萄碳氮代谢的影响，以期为葡萄生产施用γ-氨基丁酸类肥料提供理论依据和技术参数。
1 材料和方法
1.1 植物材料和试验地概况
试验以10 年生酿酒葡萄蛇龙珠（Cabernet Gernischt）为试材，对葡萄叶片进行不同浓度GABA处理，于2021年4—11月在甘肃农业大学葡萄园进行，行株距0.75 m×1.5 m，单干双臂Y形整形，南北走向。
1.2 试验设计
试验共设4个GABA浓度处理：5 mmol·L-1（T1）、10 mmol·L-1（T2）、15 mmol·L-1（T3）、20 mmol·L-1（T4），以蒸馏水处理为对照，于开花期、坐果期、膨大期、转色期对长势一致、无病虫害的植株进行叶面喷施，以叶片开始滴液为准，每个处理设3 个重复，每个重复5 株。叶片采样时间为处理后第3 天上午8:00，成熟期再取样1 次，液氮冷冻后放入-80 ℃超低温冰箱备用。
1.3 测定项目与方法
1.3.1 叶片碳代谢指标测定 可溶性总糖含量采用蒽酮-硫酸法测定[20]，使用高效液相色谱仪（美国Waters Acquity Arc）测定蔗糖、葡萄糖和果糖含量，参照贺雅娟等[21]的方法，色谱条件：XBridge BEH Amide 色谱柱（4.6 mm×150.0 mm、2.5 μm），柱温40 ℃，流动相为75%乙腈、0.2%乙胺以及24.8%超纯水，流速0.8 mL·min-1，进样量20 μL，检测波长为254 nm。
蔗糖合酶合成方向（SuSy-s）、蔗糖合酶分解方向（SuSy-c）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）、酸性转化酶（AI）、中性转化酶（NI）酶液提取参考张弦[22]的方法，酶活性测定参考潘俨[23]的方法。
1.3.2 叶片氮代谢指标测定 硝态氮含量通过水杨酸-硫酸溶液比色法测定[24]。铵态氮含量采用靛酚蓝-分光光度法测定[25]。硝酸还原酶（NR）活性采用磺胺比色法测定[26]。谷氨酰胺合成酶（GS）活性采用FeCl3 络合显色比色法测定[27]。谷氨酸合成酶（GOGAT）活性参照赵鹏等[28]的方法测定。谷氨酸脱氢酶（GDH）活性参考王小纯等[29]的方法测定。谷氨酸草酰乙酸转氨酶（GOT）和谷氨酸丙酮酸转氨酶（GPT）活性参考吴良欢等[30]的方法测定。
1.3.3 数据分析 用Excel 2016进行数据处理及作图，用SPSS 23.0对数据进行统计分析。
2 结果与分析
2.1 GABA对蛇龙珠葡萄叶片碳代谢的影响
2.1.1 GABA 对叶片可溶性糖、果糖、葡萄糖、蔗糖以及淀粉含量的影响 不同浓度GABA对蛇龙珠葡萄叶片可溶性糖、果糖、葡萄糖、蔗糖和淀粉含量的影响如表1所示，生育期内叶片可溶性糖含量呈“下降-上升-下降”的变化趋势，果糖、葡萄糖和蔗糖含量均呈先上升的波动变化趋势，淀粉含量呈先降后升的趋势。与对照相比，GABA处理于坐果期、膨大期、转色期明显提高可溶性糖含量；于开花期至成熟期提高果糖、葡萄糖和蔗糖含量；开花期、坐果期、膨大期、转色期明显增加淀粉含量，并随GABA浓度增大均呈现出先升后降的变化趋势。在不同浓度GABA处理中，可溶性糖含量在T2、T3处理后各时期较对照显著增加（p＜0.05），T2处理提升效果最佳，开花期至成熟期较对照提高了13.48%、85.94%、31.09%、58.72%、34.65%。T1、T2处理使果糖含量于坐果期、膨大期和成熟期显著增加（p＜0.05）及葡萄糖含量在膨大期、转色期显著增加（p＜0.05），而T2和T3处理使蔗糖含量在膨大期、成熟期显著增加（p＜0.05）。淀粉含量在T3、T4处理后于开花期至转色期提升效果较好，在成熟期反而显著降低其含量（p＜0.05），而T1、T2处理使其含量各时期显著增加（p＜0.05），T2处理提高效果最佳，开花期至成熟期分别较对照提高25.00%、76.63%、101.74%、112.6%、8.47%。
表1 外源GABA 对葡萄叶片可溶性糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、淀粉含量的影响
Table 1 Effects of exogenous GABA on soluble sugar,fructose,glucose,sucrose and starch contents in grape leaves（mg·g-1）
注：表中数据为（平均值±标准差），不同小写字母表示同一时期不同处理间差异显著（p＜0.05）。下同。
Note: The data in the (Table are mean ± standard deviation), and different lowercase letters indicate significant differences among different treatments in the same period(p＜0.05).The same below.
处理Treament淀粉Starch生长期Gowth period可溶性糖Soluble sugar果糖Fructose葡萄糖Glucose蔗糖Sugar对照Control T1 T2 T3 T4对照Control T1 T2 T3 T4对照Control T1 T2 T3 T4对照Control T1 T2 T3 T4对照Control T1 T2 T3 T4 33.30±0.57 c 41.59±1.59 ab 41.63±1.01 ab 43.98±1.49 a 40.01±0.20 b 13.56±1.33 d 23.10±1.62 c 23.96±0.42 bc 25.69±0.90 b 32.01±0.09 a 17.77±0.12 e 23.16±0.63 d 35.85±2.54 b 40.98±1.13 a 28.67±0.24 c 14.97±1.53 d 16.59±2.12 bc 31.82±2.01 a 23.48±0.68 b 19.69±0.07 c 42.46±0.09 c 53.78±0.17 a 46.06±2.02 b 37.65±0.07 d 34.79±0.14 e开花期Flowering period坐果期Fruiting setting period膨大期Expansion period转色期Veraison period成熟期Maturity period 19.53±0.25 c 28.71±1.14 a 22.16±1.28 b 21.38±0.58 bc 20.77±0.88 bc 12.30±0.44 c 13.33±0.31 c 22.86±2.05 a 17.80±0.39 b 18.15±0.34 b 21.02±1.01 bc 23.05±1.85 b 27.56±1.63 a 28.55±0.12 a 19.92±0.07 c 15.93±1.27 d 20.18±0.13 c 25.28±0.25 b 26.82±0.27 a 16.55±0.54 d 9.06±0.99 c 11.27±0.30 ab 12.20±0.96 a 12.34±0.74 a 10.12±0.26 bc 2.46±0.07 a 2.54±0.05 a 2.65±0.09 a 2.60±0.01 a 2.47±0.10 a 3.40±0.02 b 4.55±0.18 a 4.77±0.11 a 3.38±0.17 b 3.17±0.15 b 3.04±0.23 ab 3.59±0.30 a 3.92±0.53 a 3.47±0.20 ab 2.93±0.18 b 1.46±0.02 c 1.56±0.01 bc 1.61±0.01 b 1.73±0.02 a 1.49±0.01 bc 3.14±0.13 ab 3.98±0.12 a 3.84±0.30 a 3.34±0.19 ab 3.22±0.30 b 1.39±0.81 a 1.50±0.99 a 2.06±0.03 a 1.56±0.03 a 1.27±0.03 a 3.93±0.04 ab 4.45±0.29 a 4.42±0.10 a 3.96±0.63 ab 2.74±1.35 b 2.34±0.03 d 2.55±0.04 b 2.62±0.02 a 2.48±0.03 b 2.41±0.02 c 0.90±0.01 b 1.52±0.02 a 1.50±0.01 a 1.50±0.02 a 0.84±0.03 b 2.41±0.02 bc 3.17±0.22 a 2.62±0.03 b 2.35±0.05 bc 2.30±0.02 c 1.66±0.66 a 1.60±0.71 a 2.33±0.15 a 2.10±0.10 a 1.79±0.36 a 6.27±1.58 b 6.67±0.17 b 6.93±0.32 ab 7.39±0.28 ab 8.58±0.15 a 6.38±0.18 d 6.14±0.16 d 6.80±0.06 c 7.28±0.04 b 8.18±0.25 a 5.80±0.21 a 5.80±0.15 a 5.98±0.17 a 6.13±0.14 a 3.90±0.23 b 6.31±0.06 c 6.70±0.26 ac 8.58±0.23 a 7.17±0.21 b 5.35±0.11 d
2.1.2 GABA 对叶片蔗糖合酶（SuSy）和蔗糖磷酸合成酶（SPS）活性的影响 不同浓度GABA对葡萄叶片蔗糖合酶合成方向（SuSy-s）活性影响如图1-A所示，随着果实的生长发育，叶片SuSy-s活性呈“上升-下降-上升”的变化趋势。与对照相比，GABA处理明显增强坐果期、膨大期、成熟期SuSy-s活性，尤其在成熟期急剧增强，其中，T4处理增强效果最佳，分别较对照提高了40.95%、95.50%、138.16%（p＜0.05）；开花期、转色期T1处理显著提高其活性（p＜0.05），较对照提升33.33%、56.07%，而T4 处理降低了其活性。
图1 GABA 对叶片碳代谢关键酶活性的影响
Fig.1 Effects of GABA on key enzyme activities of carbon metabolism in leaves
生育期叶片SPS 活性逐渐升高（图1-B）。与对照相比，GABA处理后SPS活性于坐果期、膨大期和成熟期明显增强。T3、T4 处理于坐果期、膨大期提升效果较好，在转色期、成熟期降低其活性。而T2处理于坐果期、膨大期、成熟期显著增强其活性（p＜0.05），较对照提升21.57%、30.44%、15.82%。
叶片蔗糖合酶分解方向（SuSy-c）活性呈逐渐上升趋势（图1-C）。与对照相比，GABA处理使SuSy-c活性于坐果期、膨大期、转色期、成熟期明显增强；其中，坐果期、成熟期T4处理提升SuSy-c活性效果突出，于膨大期、转色期、成熟期T2、T3 处理使其活性显著上升（p＜0.05），T2 处理增强效果最佳，较对照提升86.63%、32.27%、35.72%。
2.1.3 GABA 对叶片酸性转化酶（AI）、中性转化酶（NI）活性的影响 不同浓度GABA 对葡萄叶片AI活性影响如图1-D所示，AI活性总体呈逐渐上升趋势。与对照相比，GABA 处理使AI 活性在膨大期、转色期、成熟期明显增强，尤其在成熟期T2、T3、T4处理使其活性急剧增强；其中，T4处理于坐果期、膨大期、成熟期明显增强AI 活性，但在转色期显著降低其活性（p＜0.05）；而T2 处理使AI 活性在膨大期和成熟期显著增强（p＜0.05）；T3处理使其活性在膨大期、转色期、成熟期显著增强（p＜0.05），较对照提升94.19%，20.21%，95.90%。
叶片NI 活性呈先上升的波动变化趋势（图1-E）。与对照相比，GABA 处理使NI 活性于坐果期、膨大期、转色期明显增强及成熟期急剧增强，并随GABA 浓度增加呈先升后降的变化趋势；其中，NI活性在T3、T4处理后，成熟期显著升高、膨大期和转色期反而明显降低；而T1处理于坐果期、膨大期、转色期、成熟期提升效果显著（p＜0.05），较对照提升40.61%、14.84%、39.10%、55.20%。
2.2 GABA对蛇龙珠葡萄叶片氮代谢的影响
2.2.1 GABA 对叶片硝态氮（NO3-·N）和铵态氮（NH4+·N）及GABA 含量的影响 不同浓度GABA对葡萄叶片NO3-·N含量影响如图2-A所示，NO3-·N含量在生育期内呈先升后降的变化趋势，与对照相比，GABA处理使其含量在转色期、成熟期上升并趋于稳定，并随GABA 处理浓度增加呈先升后降的变化趋势，其中，T2、T3处理明显提升其含量，T2处理显著提升NO3-·N 含量（p＜0.05），开花期至成熟期分别较对照提升51.80%、17.75%、5.86%、64.97%、89.53%。
图2 GABA 对叶片硝态氮和铵态氮以及GABA 含量的影响
Fig.2 Effects of GABA on nitrate nitrogen,ammonium nitrogen and GABA content in leaves
叶片NH4+·N含量呈先升后降的变化趋势（图2-B），与对照相比，GABA 处理后NH4+·N 含量于膨大期、转色期、成熟期明显上升，其中，T4 处理提升效果显著（p＜0.05），分别较对照升高16.31%、14.42%、18.10%；而在成熟期T2、T3处理显著提升NH4+·N含量（p＜0.05），其他时期T1、T2、T3 处理与对照基本无显著差异。
不同浓度GABA 对葡萄叶片内源GABA 含量的影响如图2-C 所示，内源GABA 含量从开花期至成熟期呈逐渐上升的变化趋势。与对照相比，外源GABA 处理使得叶片内源GABA 含量在开花期、坐果期、转色期、成熟期增加，尤其成熟期T2、T3 处理明显增加其含量，并随外源GABA 浓度增加其含量呈先升后降的变化趋势，其中，T2 处理显著增加其含量（p＜0.05），开花期、坐果期、转色期、成熟期分别较对照提高73.55%、10.46%、18.41%、30.91%。
2.2.2 GABA 对叶片硝酸还原酶（NR）活性的影响 不同浓度GABA对葡萄叶片NR活性的影响如图3-A 所示，NR 活性呈先升后降的变化趋势。与对照相比，GABA 处理在各时期明显增强NR活性，并随GABA 处理浓度增加呈先升后降的变化趋势，其中，坐果期T1、T2、T3 处理急剧增强其活性。T2处理NR 活性显著增强（p＜0.05），开花期至成熟期分别较对照提高了58.93%、57.30%、72.43%、38.36%、63.83%。
图3 GABA 对叶片氮代谢关键酶活性的影响
Fig.3 The effect of GABA on the activity of key enzymes of nitrogen metabolism in leaves
2.2.3 GABA对叶片谷氨酰胺合成酶（GS）、谷氨酸合成酶（GOGAT）以及谷氨酸脱氢酶（GDH）活性的影响 不同浓度GABA 对葡萄叶片GS 活性的影响如图3-B所示，GS活性总体呈逐渐增强的趋势。与对照相比，GABA 处理在各物候期均提高GS 活性，并随GABA 浓度增加其活性呈先升后降的变化趋势，其中，除膨大期T3、T4处理急剧增强GS活性外，其他时期T2 处理增强效果最佳，GS 活性显著增强（p＜0.05），开花期至成熟期分别较对照升高53.40%、28.72%、25.85%、25.18%、15.05%。
叶片GOGAT（图3-C）和GDH 活性（图3-D）均呈先升后降的变化趋势，GOGAT 和GDH 活性随GABA浓度增加均呈先升后降的变化趋势，GOGAT活性除开花期外其他时期明显增强，GDH活性在各时期均明显增强。其中，T2、T3 处理提升二者活性效果显著（p＜0.05），GOGAT 活性于坐果期至成熟期T2 处理较对照升高46.78%、33.41%、86.55%、58.53%，以及T3 处理较对照提升48.53%、65.54%、103.11%、46.92%；GDH 活性于开花期至成熟期T2处理较对照升高12.63%、46.78%、33.41%、86.55%、58.53 及T3 处理较对照提高5.96%、48.53%、65.53%、103.11%、46.92%。
2.2.4 GABA对叶片谷氨酸草酰乙酸转氨酶（GOT）和谷氨酸丙酮酸转氨酶（GPT）活性的影响 不同浓度GABA 对葡萄叶片GOT 和GPT 活性影响如图3-E 和图3-F 所示，GOT 和GPT 活性均呈先升后降的变化趋势。与对照相比，GABA 处理在各时期明显增强二者活性，并随GABA 浓度增加二者活性呈先升后降的趋势；其中，在成熟期T1、T2 处理使GOT和GPT活性显著增强（p＜0.05），于开花期、坐果期、膨大期和转色期T2、T3处理显著增强二者活性（p＜0.05），T2处理提升效果最优，GOT活性于开花期至成熟期T2 处理较对照升高47.75%、31.84%、10.89%、16.83%、8.01%，GPT 活性在开花期至成熟期较对照升高63.10%、11.80%、16.22%、48.28%、5.56%。
3 讨 论
植物生长过程中碳氮代谢在植株体内的动态变化直接影响着光合产物的合成、转化以及矿质营养的吸收、蛋白质的合成等[1]，氮代谢为碳代谢提供酶和光合色素，碳代谢为氮代谢提供碳源和能量，且二者需要共同的还原力和ATP、碳骨架等[31]。植物碳代谢产物主要是淀粉、可溶性糖、蔗糖、葡萄糖、果糖等，SPS、SuSy、AI、NI 等酶参与碳代谢物质的形成和转化[32]。韩丽娜等[33]对葡萄的试验研究中，通过控制施氮量增强碳代谢关键酶SPS、SS 活性，进一步促进蔗糖、葡萄糖和果糖的积累，从而提高葡萄产量和品质。植物氮代谢主要包括NO3-·N、NH4+·N的合成和固定，NR、GOGAT、GS、GDH、GOT、GPT等酶参与二者的吸收及固定[34]。吴薇等[35]的研究表明，通过控制施氮量增强NR 活性和氮代谢物含量从而促进烤烟生长发育提高品质。高松等[36]的研究通过增加大葱叶片蔗糖、还原糖、NO3-·N、NH4+·N含量和提高SPS、SS、NR、GS、GDH、GOGAT 等的活性，增强大葱生长力。因此，研究植物碳氮代谢规律，探索有效调控途径和方法，对提高作物产量和品质具有重要的作用[5，9，34]。笔者课题组在GABA对果实品质影响的研究结果中显示，GABA 处理显著提高了果实可溶性糖、蔗糖、果糖、葡萄糖和有机酸含量[37]，改善了果实品质。本研究中外源GABA 处理在生育期显著增加了蛇龙珠葡萄叶片淀粉、可溶性糖、NO3-·N 含量及提高SuSy-s、NR、GS、GDH、GOT、GPT 活性，明显增加了果糖、葡萄糖、蔗糖、NH4+·N 含量及提高SuSy-c、SPS、AI、NI、GOGAT 活性，增加了内源GABA含量，与对照相比，在各处理中10 mmol·L-1 GABA提升效果最佳。
试验研究表明，外源10 mmol·L-1 GABA处理在生育期显著增加了蛇龙珠葡萄叶片淀粉含量，与宋锁玲[34]的研究结论相似，GABA增加了甜瓜幼苗叶片淀粉含量。Chen等[38]研究发现GABA显著增加杨树茎中蔗糖、果糖和非结构性碳水化合物含量。GABA喷施后果糖含量于坐果期、膨大期和成熟期显著增加，葡萄糖含量在膨大期和转色期显著提升，蔗糖含量在膨大期和成熟期显著增加，可溶性糖总量于开花期至成熟期显著增强。GABA处理使AI活性在膨大期、转色期和成熟期显著增强，NI活性于坐果期和成熟期显著增加。同时GABA处理使得SPS活性分别于坐果期、膨大期和成熟期显著增强，SuSy-s活性于坐果期、转色期和成熟期显著增强，SuSy-c活性在膨大期、转色期和成熟期显著增强，与刘金平[39]的研究结果一致，GABA增强了不结球白菜幼苗SPS、SuSy活性。GABA通过提高GAD、GABA-T活性和CmGAD基因表达量，促进GABA的生物合成[40-41]，外源GABA处理后开花期、坐果期、转色期和成熟期葡萄叶片内源GABA 含量显著上升。研究表明，给杨树幼苗施用GABA后树体茎中蔗糖含量增加并伴随蔗糖代谢相关基因SUS 和SPS 表达上调[38，42]。在植物碳代谢中，SPS活性强弱直接影响植株体内蔗糖和淀粉的分配，其活性越低蔗糖积累越少[32]；SuSy在植株体内对蔗糖的转化方向存在催化合成（SuSy-s）和催化分解（SuSy-c），两个催化方向的转换与自身是否被磷酸化有关[43]，通常SuSy被认为主要起分解蔗糖作用，也有研究者认为其在光合器官中具有较强的催化蔗糖合成能力，还有研究者提出SuSy的作用在不同植物中存在较大差异[44]。表明外源GABA处理增加葡萄叶片蔗糖含量与SPS、SuSy 活性的增强有关。蔗糖在叶片内的贮存和转化还与AI、NI活性变化相关，可被AI、NI 不可逆分解为果糖和葡萄糖[45]。蔗糖可作为信号分子调控基因的表达，从而影响酶催化活性[46]。推测蔗糖含量变化影响了蔗糖催化分解反应活性，增强AI、NI活性促进果糖、葡萄糖的生成。外源GABA也可提高正常条件和低温条件下番茄叶片叶绿素含量，提高抗氧化酶活性和叶片净光合速率，从而增加可溶性糖、还原糖及非还原糖含量[47]。推断淀粉、可溶性糖含量的增加也与GABA 影响叶片光合作用相关。表明外源GABA 增加蛇龙珠葡萄叶片内源GABA 含量，进一步影响碳代谢相关酶活性，从而调控淀粉、可溶性糖含量增加。
本试验结果表明，外源10 mmol·L-1 GABA处理在生育期使得蛇龙珠葡萄叶片NO3-·N 含量在开花期至成熟期显著增加，且在葡萄生长后期与对照相比保持较高NO3-·N水平，与任文奇[48]的研究结果一致，GABA 增加了甜瓜幼苗叶片NO3-·N 含量。而GABA 处理后叶片NH4+·N 含量除成熟期外其他时期与对照无显著差异，可能与GS/GOGAT途径活性和GDH 活性增强影响NH4+转化有关。刘金平[39]和弓瑞娟[9]的研究发现，GABA增强了不结球白菜和生菜GS、GOGAT和NR活性。本试验结果显示，GABA处理使得GOGAT 活性于坐果期至成熟期显著增强，GS 和NR 活性在开花期至成熟期均显著增强。GABA 处理使GDH 活性在开花期至成熟期显著增强，与燕博文[49]的研究结论相似，GABA增强了玉米幼苗GDH 活性。GABA 处理后GOT、GPT 活性除成熟期外其他时期显著增强，与谷海涛等[50]的研究结果一致，GABA 增强了粳稻叶片GOT、GPT 活性。研究表明，外源GABA使生菜叶片硝酸还原酶基因表达上调，从而显著增强NR活性[51]。GABA可有效促进甜瓜根系对NO3-·N 的吸收及其向地上部分的运输[15]。表明GABA 处理增加葡萄叶片NO3-·N的积累与NR活性增强有关。植株吸收NO3-被NR还原为NH4+，NH4+在植物体内必须及时被同化来消除其对细胞的毒性，再通过主要途径GS/GOGAT循环催化下进一步被固定为酰胺态氮[15]。前人研究发现，GABA 也可诱导植株叶片中GS2/GOGAT 基因表达上调进一步增强GS/GOGAT 途径活性从而提升氮的通量[52]。推测内源GABA含量的增加影响葡萄叶片氮代谢关键酶活性，促进NO3-·N的吸收及向NH4+·N的转化固定。GDH是除GS/GOGAT途径以外的另一种NH4+同化途径，GDH既能催化NH4+与a-酮戊二酸合成谷氨酸，又能催化谷氨酸氧化脱氨释放出NH4+，在氮代谢中起着重要的作用[53]。葡萄叶片GDH 活性增强加速了NH4+的转化，同时促进谷氨酸氧化脱氨释放出NH4+。而GOT 和GPT 活性增强会消耗GDH 催化NH4+反应的合成物谷氨酸，可催化谷氨酸与其他底物的反应生成天冬氨酸和丙氨酸[54]。使NH4+的消耗大于累积，与本试验中叶片NH4+·N含量变化不显著相契合，内源GABA含量的增加进一步促进NH4+·N的转化。
在生育期内，GABA 处理不同程度提高了葡萄叶片碳代谢和氮代谢有关物质的含量和酶的活性。研究发现，GABA参与氮的储存与运输，其代谢途径被认为能够调节碳、氮营养平衡，维持植物正常的生长和发育[19]。氮素是植物必需的元素，给小麦施氮增强旗叶SS 活性、蔗糖和淀粉含量[55]。拟南芥在GABA作为唯一氮源的培养基上可正常生长[56]。推测外源GABA 处理激发了葡萄叶片碳、氮代谢活力，同时作为氮源影响叶片碳代谢，在一定程度加强了氮代谢与碳代谢的联系。
4 结 论
综上所述，10 mmol·L-1外源GABA增加葡萄叶片内源GABA 含量，从而诱导碳、氮代谢相关酶SPS、SuSy、AI、NI、NR、GS、GOGAT、GDH、GOT、GPT 活性增强，增加淀粉、可溶性糖、蔗糖、果糖、葡萄糖的积累和促进了氮素的吸收转化，提升葡萄叶片碳氮代谢水平，促进植株生长。
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