基于二次回归正交旋转探究不同植物生长调节剂对3种葡萄砧木茎段快繁的影响

葡萄（Vitis vinifera L.）是葡萄科（Vitaceae）葡萄属（Vitis L.）多年生木质藤本植物，可鲜食、制干、制汁、药用等，因其适应性强，经济效益高，广泛种植在世界各地[1-2]。新疆作为中国最大的葡萄产区，因其光热资源丰富，葡萄品质独特而闻名中外。在传统种植过程中，多以自根苗繁育，无法避免土壤干旱[3]、盐渍化[4]等生态脆弱的问题，这严重制约其产业发展。因此，采用抗性砧木成为解决这一问题的有效措施之一。5BB、1103P、SO4、贝达、山河1号等葡萄砧木具有较强抗旱、抗盐碱能力，且生根和嫁接状况良好[5-6]。但在实际生产中，砧木通过扦插等方式繁殖数量有限，且易感染病毒[7]。茎段快繁作为植物组织培养的关键技术之一，具有取材方便、不易污染、繁殖系数高的特点，可实现苗木脱毒、离体再生，已成为欧美地区葡萄栽培的主流方式[8- 9]。Yildirim 等[10]研究发现，MS 培养基比WPM、QL、DWK 培养基所培养的Öküzgözü 葡萄和Boğazkere葡萄生长效果好；蔡文博等[11]对夏黑、红地球、巨峰和玫瑰香进行增殖培养和生根诱导时发现，WPM培养基比1/2MS 培养基中的葡萄茎段萌发率高，且叶片长势好，生根量多，更利于组培苗扩繁。多种植物生长调节剂的相互作用对植株快繁会产生一定的积极作用。林茜等[12]对阳光玫瑰的诱导培养时发现，1.50 mg·L-1 6-BA 和0.20 mg·L-1 NAA 的相互作用可得到最高的萌芽率。农艳丰等[13]发现，在阳光玫瑰继代培养时添加1.50 mg·L-1 KT和0.10 mg·L-1 IAA 的无菌芽较为粗壮，叶色更深。苏玲等[14]在贵妃玫瑰的生根培养中发现，以1/2MS 培养基为基本培养基，并添加0.50 mg·L-1 IBA 时，其生根率达到最高，根系生长状况最优。中国大部分研究集中在鲜食和酿酒葡萄上，对砧木研究较少，且不同的葡萄品种对培养基中各成分的响应各不相同[15]，探究不同的植物生长调节剂对繁殖系数的影响已成为建立高效茎段快繁体系的关键所在。笔者在本研究中旨在通过对5BB、1103P、SO4葡萄砧木在初代培养、继代培养、生根培养过程中不同培养基和植物生长调节剂的筛选，以期为葡萄砧木的快速繁殖和生产应用提供参考依据。

1 材料和方法

1.1 材料

供试材料为来自新疆农业大学三坪教学实践基地的5BB、1103P、SO4一年生苗，其中5BB砧木亲本为V.berlandieri×V.riparia，1103P砧木亲本为V.berlandieri‘Rességuier’×V. rupestris‘Du Lot’，SO4 砧木亲本为V.berlandieri×V.riparia‘No.4’[16]，将其种植在新疆农业大学园艺学院特色果树研究中心室内阳台，进行盆栽苗培养，每个品种30盆。约60 d后，取直径为1～2 mm粗半木质化的新梢进行试验处理。

1.2 方法

1.2.1 外植体的消毒 将新梢剪成2～3 cm 长的单芽茎段，放在烧杯中，盖上纱布，用流水冲洗1 h，去除表面污渍。随后在超净工作台上，以75%乙醇浸泡30 s，用0.10%HgCl 溶液消毒8 min，随后用无菌水冲洗3～5次，去除外植体表面消毒剂残留，最后将茎段置于已灭菌的接种盘中备用。

1.2.2 初代培养 以B5、MS、WPM 培养基为基本培养基，同时添加2.00 mg·L-1 6-BA、0.20 mg·L-1 IBA、0.20 mg·L-1 GA3、30 g·L-1蔗糖、7 g·L-1琼脂，调节pH为5.80。在超净工作台上，剪去外植体两端浸染过消毒剂的部分，留取长1.50～2.00 cm 带腋芽的茎段，接种于培养基上，每瓶接1 个茎段，每种培养基10瓶，3次重复。培养30 d后统计污染率、死亡率和腋芽萌发率。培养条件为：培养温度（25±1）℃，光照度2000～2500 lx，光照时间12 h·d-1。

1.2.3 继代培养 外植体培养30 d后，待萌发的丛生芽生长至长度为5～6 cm时进行继代培养。剪切萌发的丛生芽，去除叶片后剪成单芽茎段（长10～15 mm）。继代培养选用三因素二次回归正交旋转组合试验设计，以初代培养所筛选的MS 培养基为基本培养基，并添加不同质量浓度的3种植物生长调节剂（6-BA、IBA、GA3）、30 g·L-1蔗糖、7 g·L-1琼脂，调节pH 为5.80。

参照高林等[17]的二次回归正交旋转组合试验设计，设6-BA 质量浓度为1～3.00 mg·L-1、IBA 质量浓度为0～0.50 mg·L-1、GA3质量浓度为0～1.00 mg·L-1，3 种激素各设5 个浓度水平进行组合试验。各水平编码值与浓度详见表1。

根据试验设计，优化后的水平编码值与激素质量浓度如表2所示。其中，X1、X2、X3分别代表6-BA、IBA、GA3的处理浓度。每个处理接种3 瓶，每瓶接种一个丛生芽，3组重复。30 d后统计不定芽的增殖情况，计算增殖系数（分别以Y1、Y2、Y3 代表5BB、1103P 和SO4 葡萄砧木的增殖系数）。培养条件与初代培养条件相同。

1.2.4 生根培养 将继代培养中长势相近的丛生芽切下，转接到生根培养基上。以1/2MS 培养基为基本培养基，添加不同质量浓度的IBA（0、0.50 mg·L-1、1.00 mg·L-1、1.50 mg·L-1）和Ac（0、0.10 g·L-1、0.20 g·L-1），并附加30 g·L-1蔗糖、7 g·L-1琼脂，调节pH 为5.80，共12 个处理，每个处理接种10 瓶，每瓶1 株，重复3组。接种后先进行一段时间的暗培养（0 d、3 d、7 d），随后进行12 h·d-1光周期培养，30 d后统计根长和生根系数。培养条件与初代培养条件相同。

生根系数=总生根数/总接种苗数。

1.3 数据分析

采用Microsoft Excel 2010 进行数据整理，DPS软件进行二次回归正交旋转组合试验设计，SPSS 20.0软件进行单因素方差分析（Duncan法，p＜0.05）。

2 结果与分析

2.1 不同培养基对茎段初代培养的影响

由表3可知，不同培养基对3种葡萄砧木茎段初代培养的腋芽萌发率和平均株高存在显著差异（p＜0.05）。5BB 砧木中，MS 培养基的腋芽萌发率达到100%，株高达到最大为25.20 mm，且茎段无污染死亡，B5 培养基和WPM 培养基的腋芽萌发率均为96.67%，但B5 培养基丛生芽的株高略大于WPM培养基，且WPM培养基的死亡率较高。1103P砧木的3种培养基的腋芽萌发率均达到100%，且茎段无污染死亡，但MS培养基的平均株高达到最大，为20.90 mm。SO4 砧木中的MS 和WPM 培养基的腋芽萌发率达到100%，且茎段无污染死亡，但MS 培养基的株高略高于WPM 为22.43 mm，B5 培养基的腋芽萌发率最低（96.67%），且污染率为3.33%。各砧木在不同培养基中的生长状况如图1所示。

2.2 不同植物生长调节剂对增殖系数的影响

2.2.1 二次回归方程的建立 由表2中5BB葡萄砧木的数据分析可得二次回归方程Y1=0.71-0.05 X1-0.07 X2+0.06 X3+0.55 X12+0.32 X22+0.22 X32+0.03 X1X2-0.06 X1X3+0.03 X2X3。由表4 中F 值可知，F1=4.456＜F0.05（2，8）=4.46，回归方程失拟不显著，认为所选用的回归模型适当，未受其他因子的影响。回归显著性检验F2=5.448＞F0.05（3，5）=5.41，回归显著，回归方程拟合较好，模型准确度可达95%。在剔除α=0.10 时的不显著项，得到优化后的方程Y1=0.71+0.55 X12+0.32 X22+0.22 X32。

由表2 中1103P 葡萄砧木的数据分析可得二次回归方程Y2=0.93+0.04 X1-0.16 X2-0.04X3+0.21 X12+0.23 X22+0.19 X32-0.07 X1X2+0.07 X1X3-0.01 X2X3。由表5 中F 值可知，F1=2.647＜F0.05（9，14）=2.65，回归方程失拟不显著，认为所选用的回归模型适当，未受其他因子的影响。回归显著性检验F2=4.818＞F0.05（9，5）=4.77，回归显著，回归方程拟合较好，模型准确度可达95%。在剔除α=0.10时的不显著项，得到优化后的方程Y2=0.93-0.16 X2+0.21 X12+0.23 X22+0.19 X32。

由表2中SO4葡萄砧木的数据分析可得二次回归方程Y3=0.81+0.13 X1+0.01 X2+0.01X3+0.27 X12+0.13 X22+0.29 X32-0.10 X1X2-0.24 X1X3+0.01 X2X3。由表6 中F 值可知，F1=2.488＜F0.05（7，21）=2.49，回归方程失拟不显著，认为所选用的回归模型适当，未受其他因子的影响。回归显著性检验F2=6.839＞F0.05（3，4）=6.59，回归显著，回归方程拟合较好，模型准确度可达95%。在剔除α=0.10时的不显著项，得到优化后的方程Y3=0.81+0.13 X1+0.27 X12+0.13 X22+0.29 X32-0.24 X1X3。

2.2.2 单因素效应分析 采用“降维法”对3种植物生长调节剂进行单因素效应分析，如表4 所示，X1、X2、X3的均方分别为0.0371、0.074、0.0423，由此可知，影响5BB 砧木增殖培养的3 种因素的主次顺序为：IBA＞GA3＞6-BA。如表5所示，X1、X2、X3的均方分别为0.0169、0.3713、0.0268，由此可知，影响1103P 砧木增殖培养的3 种因素的主次顺序为：IBA＞GA3＞6-BA。如表6 所示，X1、X2、X3的均方分别为0.2470、0.0022、0.0004，由此可知，影响SO4砧木增殖培养的3 种因素的主次顺序为6-BA＞GA3＞IBA。图2为各编码值下3种植物生长调节剂对增殖系数影响的变化趋势，3 种植物生长调节剂对3种葡萄砧木的增殖效果均呈现先降低后升高的变化趋势，且6-BA 的增殖效果普遍高于IBA 和GA3，当质量浓度均处于中间编码值时，即6-BA 为2.00 mg·L-1、IBA 为0.25 mg·L-1、GA3为0.50 mg·L-1时，各个品种的增殖效果均最优。

2.2.3 两因素相互作用效应分析 由表4、表5 可知，5BB、1103P砧木的回归方程中，X1X2、X1X3和X2X3的交互作用在α=0.10 时不显著，即6-BA 与IBA、6-BA与GA3、IBA与GA3的交互作用在α=0.10时不显著；由表6可知，SO4砧木的回归方程中，X1X2和X2X3的交互作用在α=0.10 时不显著，而X1X3的交互作用在α=0.10时显著，即6-BA与IBA、6-BA与GA3的交互作用在α=0.10 时不显著，IBA 与GA3的交互作用在α=0.10时显著。

对3种植物生长调节剂之间相互作用的影响效果进行比较分析，由图3 可知，当6-BA 和IBA 均处于最高浓度水平时，5BB、SO4 的增殖系数达到最大；当6-BA 处于最高质量浓度水平，IBA 最低质量浓度水平处时，1103P增殖系数达到最大。

由图4可知，当6-BA 和GA3处于高质量浓度水平或低质量浓度水平时，对5BB、1103P 的增殖系数并无明显影响；当6-BA处于最高质量浓度水平，GA3最低质量浓度水平处时，SO4增殖系数达到最大。

由图5可知，当IBA和GA3均处于最高质量浓度水平时，5BB、SO4的增殖系数达到最大；当IBA最低质量浓度水平，GA3处于最高质量浓度水平或最低质量浓度水平时，1103P增殖系数均可达到最大。

2.2.4 频率分析法模拟最优值 5BB砧木优化方案中各变量取值的频率分布如表7 所示，增殖系数大于1.35 的方案有112 个，其中95%的试验方案中，6-BA适宜的编码值范围为-0.45～4.45，IBA 适宜的编码值范围为-0.38～0.88，GA3 适宜的编码值范围为-0.73～1.73，取平均值为最适浓度所对应的编码值，即当6-BA 的质量浓度为2.00 mg·L-1、IBA 的质量浓度为0.25 mg·L-1、GA3的质量浓度为0.50 mg·L-1时，增殖培养的效果可达到最优（图6-A）。

1103P 砧木优化方案中各变量取值的频率分布如表8 所示，增殖系数大于1.31的方案有114个，其中95%的试验方案中，6-BA 适宜的编码值范围为-0.51～4.51，IBA适宜的编码值范围为-0.27～0.77，GA3适宜的编码值范围为-0.73～1.73，取平均值为最适质量浓度所对应的编码值，即当6-BA的质量浓度为2.00 mg·L-1、IBA 的质量浓度为0.25 mg·L-1、GA3的质量浓度为0.50 mg·L-1时，增殖培养的效果可达到最优（图6-B）。

SO4 砧木优化方案中各变量取值的频率分布如表9 所示，增殖系数大于1.22 的方案有111 个，其中95%的试验方案中，6-BA 适宜的编码值范围为-1.03～4.07，IBA适宜的编码值范围为-0.38～0.88，GA3适宜的编码值范围为-0.86～1.58，取平均值为最适质量浓度所对应的编码值，即当6-BA的质量浓度为1.52 mg·L-1、IBA 的质量浓度为0.25 mg·L-1、GA3的质量浓度为0.36 mg·L-1时，增殖培养的效果可达到最优（图6-C）。

2.3 不同浓度IBA和Ac对生根培养的影响

由表10～表12可知，不同质量浓度的IBA和Ac在不同时间的暗处理下对不同砧木根长及生根系数的影响程度各不相同，各处理间存在显著差异（p＜0.05），以暗培养7 d、0.10 g·L-1的Ac 更有利于根的生长。5BB和SO4砧木的根长和生根系数整体随着暗培养时间、IBA质量浓度的增加而增加，IBA质量浓度为1.50 mg·L-1时，5BB 砧木的生根系数可达2.60，生长状况如图7-A所示，SO4砧木的生根系数可达1.47，生长状况如图7-C所示。1103P砧木随着IBA 质量浓度的增加呈现先增加后减少的变化趋势，当IBA质量浓度为1.00 mg·L-1时，生根系数可达2.30，生长状况如图7-B所示。

3 讨论

3.1 不同培养基对茎段初代培养的影响

培养基是外植体赖以生存和发展的营养基质，其无机物、有机物含量的差异会对芽的诱导造成不同的影响[18]。杨光等[19]对状元红葡萄研究时发现，相比MS 培养基和B5 培养基，1/2MS 培养基可获得更高的茎段腋芽萌发率，这可能是因为1/2MS 培养基中无机盐含量较少，低盐反而促进了芽的萌发。B5 培养基为高硝酸钾培养基，铵盐较少，对试管苗的生长抑制作用较小，有利于芽的萌发[20]。Mozafari等[21]研究时发现，MS 培养基比WPM 培养基更适合Khoshnav、Farkhi、Bidaneh Sefid葡萄外植体的培养，更利于芽的生长。这与本研究结果一致，即MS 培养基更利于茎段腋芽的萌发。

3.2 不同植物生长调节剂对增殖系数的影响

继代培养是试管苗增殖扩繁的重要环节之一，除营养物质外，还可通过多种植物生长调节剂协同作用共同促进试管苗生长，从而提高增殖效果[22]。植物生长调节剂浓度范围过高或过低都会影响外植体的生长，而利用二次回归正交旋转组合设计，可进一步优化各个植物生长调节剂的浓度范围，从而更准确地计算出适宜不同品种所需的浓度范围[23]。Alizadeh等[24]对4个遗传不同的葡萄砧木Dogridge、SO4、H-144和3309C研究时发现，6-BA和NAA的联合使用更利于促进芽的增殖，即当6-BA质量浓度为2.00 mg·L-1，NAA 质量浓度为0.20 mg·L-1更利于芽的增殖，并且在一定程度上可以缩短培养周期。Batukaev 等[25]研究时发现，0.50 mg·L-1 6-BA 和2.00 mg·L-1 KT有利于提高复杂抗性葡萄品种芽的增殖效果。Kinfe等[26]研究时发现，不同质量浓度的BAP 和IBA 能促进芽的增殖，当6-BA 质量浓度为1.00 mg·L-1，IBA质量浓度为0.10 mg·L-1时，Chenin blanc 葡萄和Canonannon 葡萄的增殖效果最好，在6-BA 质量浓度为2.00 mg·L-1，IBA 质量浓度为0.10 mg·L-1时，Ugni blanc 葡萄的增殖效果最好。Khan等[27]对King’s Ruby葡萄研究时发现，在1.00 mg·L-1 6-BA和0.10 mg·L-1 GA3组合优化的培养基中，芽数量和长度最大。6-BA和KT是较为稳定的细胞分裂素，可以促进细胞分裂和扩大，在增殖培养阶段，NAA 增殖效果略强于IBA，GA3可以打破休眠从而促进细胞生长[28]。由此可知，对于不同品种，选择合适的植物生长调节剂及其浓度是提高增殖系数的关键所在[29]。

3.3 不同浓度IBA和Ac对生根培养的影响

生根培养是植株成苗的关键，除了受植物生长调节剂的影响外，还与环境等多种因素的影响有关[30]。本研究表明，适宜5BB、SO4葡萄砧木生根培养的IBA 质量浓度为1.50 mg·L-1，适宜1103P 葡萄砧木生根培养的IBA 质量浓度为1.00 mg·L- 1。Amiri等[31]对Sultanine葡萄研究时发现，在1/2MS培养基中添加1.00 mg·L-1 IBA 生根率最高，可达95%。IBA作为常见的生长素对诱导不定根的生长具有一定的特异性[32]，同时，在生根培养基中加入一定质量浓度的Ac会增加根长和生根频率，对提高根系质量至关重要[33]。笔者在本研究中发现，添加Ac的处理中，试管苗的生根情况均优于未添加Ac的处理。Lazo等[34]对火焰无核的研究中发现，在1/2MS培养基中添加2.00 mg·L-1 IBA、0.20 g·L-1Ac，根系可获得较好的发育。由此可知，适量的活性炭可通过吸附作用在创造黑暗环境的同时促进试管苗生根[35]。

4 结论

本研究表明，最适宜3 种葡萄砧木初代培养的培养基均为MS 培养基，萌发率均可达100%。最适宜5BB 和1103P 葡萄砧木的6-BA 质量浓度为2.00 mg·L-1、IBA 质量浓度为0.25 mg·L-1、GA3质量浓度为0.50 mg·L-1；最适宜SO4葡萄砧木的6-BA质量浓度为1.52 mg·L-1、IBA质量浓度为0.25 mg·L-1、GA3质量浓度为0.36 mg·L-1。最适宜3 种葡萄砧木生根培养的暗培养时间均为7 d，Ac 质量浓度均为0.10 g·L-1，最适宜5BB、SO4 葡萄砧木生根培养的IBA 质量浓度为1.50 mg·L-1，5BB 葡萄砧木的生根系数可达2.60，SO4葡萄砧木的生根系数可达1.47；最适宜1103P葡萄砧木生根培养的IBA质量浓度为1.00 mg·L-1，生根系数可达2.30。

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Effects of different plant growth regulators on rapid propagation of three types of grape rootstocks based on quadratic regression orthogonal rotation

LI Zhihui,LIU Chunyan,PENG Xue,XUE Jing,DENG Hui,ZHOU Long*

(Collegeof Horticulture,Xinjiang Agricultural University,Urumqi 830052,Xingjiang,China)

Abstract:【Objective】Xinjiang is the largest grape producing area in our country, and grape industry has developed rapidly,but the problems of soil drought and salinization in some areas have become the factors restricting its industrial development. Using resistant rootstocks has become one of the most effective measures for grape cultivation in the world. However, in actual production, grape rootstock breeding quantity is limited,because most rootstocks are susceptible to virus.Therefore,using plant tissue culture to cultivate strong seedlings has become one of the important ways.This study aimed to establish a high-efficiency stem section rapid propagation system by screening different media and plant growth regulators concentration for 5BB,1103P and SO4 grape rootstock varieties in the process of primary culture, subculture, and rooting culture, so as to provide reference for rapid propagation and production of grape rootstocks.【Methods】The test materials were 5BB, 1103P and SO4 annual rootstock seedlings from the Sanping Teaching Practice Base of Xinjiang Agricultural University, which were planted in the Characteristic Fruit Tree Research Center, College of Horticulture, Xinjiang Agricultural University for potted seedling cultivation.After about 60 days,the diameters of 1-2 mm thick semi-lignified canes were taken for experimental treatment. Explant disinfection was as below: cutting new shoots into 2-3 cm long stem segment with a single bud, putting into the beaker, covering with gauze,rinsing 1 hour,and removing surface stains.Then,the explants were soaked in 75% ethanol for 30 s on the ultra-clean bench,disinfected with 0.10%HgCl2 solution for 8 minutes,and rinsed with sterile water for 3-5 times to remove the residual disinfectant on the surface of the explants.Finally,the stems were placed in the sterile inoculation plate for further use. In primary culture, B5, MS and WPM medium were used as the basic medium,and 2.00 mg·L-1 6-BA,0.20 mg·L-1 IBA,0.20 mg·L-1 GA3,30 g·L-1 sucrose,and 7 g·L-1 agar were added at the same time,pH was adjusted to 5.80,1 stem segment per bottle, 10 bottles for each medium, and the experiment was repeated 3 times.After 30 days of culture, the pollution rate, mortality rate and axillary bud germination rate were counted. The subculture adopted a quadratic regression orthogonal rotation combined experimental design, and different concentrations of 6-BA(concentration of 1-3.00 mg·L-1),IBA(concentration of 0-0.50 mg·L-1),and GA3(concentration of 0-1.00 mg·L-1)were added,and its effect on the proliferation coefficient was explored.In rooting culture,1/2MS medium was used as the basic medium,and different concentrations of IBA(0,0.50 mg·L-1,1.00 mg·L-1,1.50 mg·L-1)and Ac(0,0.10 g·L-1､ 0.20 g·L-1)were added,and its effect on rooting coefficient was explored. During the whole culture process, the culture conditions were as follows: the culture temperature was(25±1)℃,the light intensity was 2000-2500 lx,and the lighting time was 12 h·d-1.【Results】During primary culture, by screening three different media, it was found that compared with B5 medium and WPM medium, the primary medium suitable for the three types of grape rootstocks were MS medium,supplemented with 2.00 mg·L-1 6-BA,0.20 mg·L-1 IBA,and 0.20 mg·L-1 GA3,and the germination rate could reach 100%. During subculture, the effects of different concentrations of 6-BA, IBA and GA3 on the proliferation coefficient of grape rootstocks were explored through quadratic regression orthogonal rotation combined experimental design.It was found that the primary and secondary order of the three plant growth regulators affecting the proliferation and culture of 5BB and 1103P grape rootstocks was: IBA＞GA3＞6-BA, and the most suitable proliferation culture formula was MS+2.00 mg·L-1 6-BA+0.25 mg·L-1 IBA+0.50 mg·L-1 GA3; the primary and secondary order of the three plant growth regulators affecting the proliferation and culture of SO4 grape rootstocks was: 6-BA＞GA3＞IBA,and the most suitable proliferation culture formula was MS+1.52 mg·L-1 6-BA+0.25 mg·L-1 IBA+0.36 mg·L-1 GA3.During rooting culture,by adding different concentrations of IBA and Ac,under different dark treatment conditions(0 d,3 d and 7 d),the optimal concentration and dark treatment time of plant growth regulators for rooting culture were explored.It was found that the most suitable culture formula for rooting culture of 5BB and SO4 rootstocks was 1/2MS+1.50 mg·L-1 IBA+0.10 g·L-1 Ac,and dark-treated for 7 days,the rooting coefficient of 5BB rootstocks could reach 2.60,and that of SO4 rootstocks up to 1.47. The most suitable culture formula for rooting culture of 1103P rootstock was 1/2MS+1.00 mg·L-1 IBA+0.10 g·L-1 Ac, and dark-treated for 7 days, and the rooting coefficient could reach 2.30.【Conclusion】The most suitable medium for primary culture of three types of grape rootstocks was MS medium. The optimal concentrations of 6-BA, IBA and GA3 for 5BB and 1103P grape rootstocks were 2.00 mg·L-1,0.25 mg·L-1 and 0.50 mg·L-1,respectively.The optimal concentrations of 6-BA,IBA and GA3 for SO4 grape rootstocks were 1.52 mg·L-1,0.25 mg·L-1 and 0.36 mg·L-1.The optimal dark culture time for rooting of the three types of grape rootstocks was 7 d, and the Ac concentration was 0.10 g·L-1. The optimal IBA concentration for rooting of 5BB and SO4 grape rootstocks was 1.50 mg·L-1. The rooting coefficient of 5BB grape rootstocks was 2.60, and that of SO4 grape rootstocks was 1.47. The optimal IBA concentration for rooting culture of 1103P grape rootstock was 1.00 mg·L-1,and the rooting coefficient was 2.30.In the study it was found that the effects of different media and plant growth regulators on the stem rapid propagation of three types of grape rootstocks were preliminarily explored, and a reference for the rapid propagation and production application of grape rootstocks was provided.

Key words: Grape rootstock; Plant growth regulator; Stem rapid propagation; Quadratic regression orthogonal rotation

中图分类号：S663.1

文献标志码：A

文章编号：1009-9980(2023)02-0286-14

DOI:10.13925/j.cnki.gsxb.20220259

收稿日期：2022-05-24

接受日期：2022-07-18

基金项目：新疆维吾尔自治区重点研发项目（2020B01003-1）；新疆农业大学研究生科研创新项目（XJAUGRI2022018）

作者简介：李志慧，女，在读硕士研究生，研究方向为葡萄栽培生理。Tel：17799236506，E-mail：lizhihui20220418@126.com

*通信作者Author for correspondence.Tel：15099536836，E-mail：zhoulong2004@126.com