铁是植物生长发育必需的微量元素,参与了植物的光合作用、呼吸作用等代谢过程[1]。缺铁直接引起植物叶片黄化,梨在生长期因缺铁引起的黄化病在中国新疆、渭北、四川盆地、黄河故道[2-4]等梨树种植区是常见的。目前虽然通过土壤施肥、枝干注射、叶片喷施铁肥及喷施激素[5-6]等方法提高土壤中有效铁含量和树体中铁的移动性,可以在一定程度上矫正果树缺铁失绿问题,但是不能从根本上解决植物的缺铁问题[7]。有研究表明,砧木影响嫁接品种对铁元素的吸收与利用[8],选育铁高效的砧木,可以提高品种对铁的吸收利用效率[9-10]。中国是世界梨属植物重要的起源中心[11-12],有丰富的梨砧木资源,其中杜梨(Pyrus betulifolia)抗寒、抗旱、耐盐碱、适应性强[13-16],广泛分布于中国华北、西北、东北南部等地,常被用作梨的砧木。前期的研究发现,不同生态型的杜梨对铁的吸收能力不同。因此,笔者在本试验中通过研究杜梨缺铁生理响应的差异性,对不同生态型的杜梨进行耐缺铁性评价,筛选对缺铁耐性强的杜梨类型,为选育铁高效砧木、解决梨树缺铁问题提供理论依据。
参试杜梨种子分别采自山东省临沂市临沭县、甘肃省庆阳市宁县和河南省洛阳市栾川县三处具有代表性的野生杜梨群体,每处种源地采种的杜梨群体均大于30株,混合采种后用于以下试验。为了表述方便,依据产地分别用SD(山东杜梨)、GD(甘肃杜梨)和HD(河南杜梨)表示。选择大小一致饱满的种子,经灭菌处理后置于垫有湿纱布的培养皿中,置于4 ℃的条件下催芽。种子露白后进行穴盘播种,穴盘营养土体积比为草炭∶珍珠岩=4∶1。
选取高度一致、10枚真叶的幼苗移栽到高纯度石英砂作基质的穴盘中,穴盘尺寸为56 cm×32 cm×16 cm(28 孔)。石英砂粒径组成:>2 mm 的占1%,>1~2 mm占9%,>0.5~1.0 mm占20%,<0.5 mm占70%[17]。完全营养液缓苗2 周后用于试验处理。完全营养液参照Ma等[18]的方法配置。试验设0、20、40 μmol·L-1 FeNa-EDTA 3 个供铁浓度处理,每个处理有不同生态型杜梨幼苗各84株,每个重复28株,共3个重复,处理期间每隔5 d浇灌1次营养液,每次每穴浇灌50 mL。初始营养液的pH用NaOH或HCl调至(6.0±0.1)。处理60 d后进行指标测定。试验在人工气候室进行,温度为22~27 ℃,相对湿度为65%~85%,光照度为8000~10000 lx,光照时间为14 h。
根据叶片黄化程度,将叶片的黄化级值分为5个等级[19]:
0级,完全没有发生黄化。
1级,叶片边缘轻微黄化,黄化不超过1/2。
2级,叶片脉间黄化加重,黄化不超过3/4。
3级,叶片脉间失绿,全叶黄化。
4 级,叶片严重失绿甚至白化,叶边缘焦枯,严重的全叶焦枯(图1)。
图1 叶片黄化指数分级
Fig.1 Index grading of leaf yellowing
取每株新叶(茎端的3 枚完全展开叶片),确定其黄化级数,按以下公式计算每个单株黄化指数:黄化指数/%=[Σ(黄化级值×相应黄化级值叶片数)/(总叶片数×4)×100]。取平均值作为该生态型杜梨的黄化指数,反映其黄化程度。
采用手持SPAD-502叶绿素仪(Konica Minolta,日本)对梨幼苗相同部位的新叶进行测定。
植物干质量的测定:鲜样称质量后在烘箱中105 ℃杀青20~30 min,然后在85 ℃恒温烘干至恒质量,用电子天平(万分之一)称量质量(g)。根冠比值=根干质量/(茎干质量+叶干质量)。
参照殷文娟等[20]的方法并加以改进,将营养液初始pH 调为6.00,把不同处理的梨幼苗放进50 mL营养液中,24 h后测定根际溶液pH,以营养液pH变化来衡量根系酸化能力。
使用CIRAS-3便携式光合仪(PP Systems,美国)进行测定。在晴朗上午10:00—11:00测量植株新叶的净光合速率(Pn),使用荧光叶室,光质为红蓝光,光照度设定为200 μmol·m-2·s-1,CO2浓度380~450 μL·L-1,叶片温度(25±1)℃,气体流速300 mL·min-1,空气湿度65%~85%[21]。
参照许良政等[22]的方法进行测定,设Fe(Ⅱ)-联吡啶的摩尔吸收系数为8650 mol·L-1·cm-1,反应时间(t)为2 h,比色波长为523.3 nm。按下列公式计算还原酶活性:还原酶活性(μmol·g-1·2 h-1)=(8650×106)/(FW×OD)。
将整株幼苗根系洗净后,使用根系扫描仪(Epson Perfection V800 photo)扫描之后,用根系分析软件(WinRHIZO 2007 版)对根体积及总根尖数进行测定分析。
全铁和活性铁含量均使用ICP-OES(Optima8000,美国)进行测定。全铁含量测定前处理:称取1.00 g 干样置三角瓶中,加优级纯硝酸10 mL 和高氯酸2 mL,于180 ℃消解至1 mL 左右停止加热。加入10 mL 超纯水,沸腾3~5 min,超纯水定容50 mL 后上机测定。活性铁含量测定前处理:参考黄宏文[23]的方法,略有改动:将鲜样烘干磨成粉末,称取1.00 g,放入具塞试管,加入10 mL的0.1 mol·L-1稀盐酸连续振荡12 h浸提后过滤,上机测定。根系全铁或活性铁积累量(mg·plant-1)=根系干质量×根系全铁或活性铁含量。
样品于105 ℃杀青30 min,80 ℃烘干至恒质量,粉碎过0.25 mm筛后,采用凯氏定氮法[24]进行测定。其他矿质元素含量测定方法同全铁含量测定。
用Microsoft Excel 处理数据,Graph pad prism6软件作图,DPS 软件在p <0.05 的水平上计算最小显著性差异(LSD)值。
缺铁明显影响了杜梨幼苗的生长,受影响的程度随着缺铁程度的增加而增加,但不同生态型的杜梨幼苗生长受影响的程度不同。山东杜梨(SD)本身生长势比其他两个生态型的杜梨强,缺铁对其株高的影响最大。由表1可以看出,SD株高40 μmol·L-1处理显著大于20 μmol·L-1处理,显著大于0 μmol·L-1处理;而甘肃杜梨(GD)株高40 μmol·L-1处理显著高于0 μmol·L-1处理,但二者与20 μmol·L-1处理无显著差异;河南杜梨(HD)株高是3 种杜梨中最矮的,虽然也受到缺铁的影响,但影响最小,处理间差异不显著。植株干质量(根和冠)测定结果与株高相似,也随着缺铁程度的增加而显著下降。正常干质量较大的SD 受到缺铁影响的程度显著高于GD和HD。由根冠比可以看出,除HD 在供铁浓度为20 μmol·L-1时差异不显著外,均表现了对地上部的影响大于地下部。同一生态型杜梨幼苗的茎粗在不同处理间差异不显著。说明生长期内的株高、干质量可能是表征杜梨植株缺铁生长状态的良好指标。从缺铁影响生长情况看,不同生态型的杜梨生长势不同,生长量大的受影响大。因此,3 种不同生态型的杜梨SD 受到的影响最大,HD 最小,GD居中。
表1 不同铁浓度处理对不同生态型杜梨幼苗生长指标的影响
Table 1 Effects of different iron concentrations on growth indexes of different ecotypes of P.betulifolia
注:同列不同小写字母表示不同处理间差异显著(p<0.05,LSD)。下同。
Note:Different lowercase letters in the same column indicate significant differences between the treatments(p<0.05,LSD).The same below.
品种Variety SD GD HD c(铁)Iron concentration/(μmol·L-1)020400 2040020 40株高Height of plant/cm 18.9±2.4 c 21.3±3.2 b 23.3±3.4 a 13.1±1.9 efg 14.9±1.6 de 15.3±1.5 d 12.2±2.6 g 13.8±1.8 defg 13.9±1.9 defg茎粗Diameter of stem/mm 2.61±0.32 abc 2.64±0.31 ab 2.65±0.33 a 2.41±0.19 c 2.44±0.17 abc 2.50±0.20 abc 2.43±0.21 bc 2.58±0.32 abc 2.57±0.33 abc根干质量Root dry mass/g 0.87±0.10 e 1.26±0.12 b 1.53±0.13 a 0.72±0.09 f 1.06±0.15 d 1.16±0.15 c 0.69±0.11 f 1.01±0.12 d 1.19±0.10 bc根冠比Root shoot ratio 0.73±0.03 f 0.68±0.03 g 0.63±0.02 h 0.88±0.03 b 0.82±0.03 d 0.78±0.03 e 0.91±0.06 a 0.86±0.02 c 0.85±0.02 c冠干质量Shoot dry mass/g 1.20±0.09 e 1.86±0.12 b 2.43±0.13 a 0.81±0.10 f 1.30±0.15 d 1.49±0.14 c 0.75±0.11 f 1.18±0.12 e 1.40±0.10 c
叶片黄化程度随着供铁浓度的降低而增加(图2-A)。由图2-B 可以看出,供铁浓度为40 μmol·L-1时,不同生态型杜梨的叶色有一定的差异,SD 显著高于HD,说明生长量大的SD 可能需要更多的铁来满足正常生长需要;当供铁浓度降低时,GD 的叶片黄化指数显著高于(20 μmol·L-1处理)或类似于(0 μmol·L-1处理)SD,二者显著高于HD。综合生长量因素分析,GD更易表现缺铁黄化。
图2 缺铁对不同生态型的杜梨幼苗叶片黄化的影响
Fig.2 Effects of iron deficiency on leaf chlorosis of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
由图3-A 可以看出,随着供铁浓度的降低,3 种杜梨幼苗的新叶相对叶绿素含量(SPAD 值)与叶片黄化指数变化相似,均呈现下降趋势。在2 个缺铁处理中,HD 的SPAD 值均显著高于其他2 种杜梨。随着供铁浓度降低,SPAD 值以GD 下降幅度最大(38.8%),SD次之(30.5%),HD最小(29.2%)。由图3-B可以看出,缺铁导致净光合速率急剧下降,各处理中SD 均显著低于HD。但GD 的下降幅度最大,SD 次之,HD 最小。净光合速率的变化表现了与SPAD值变化的一致性。仅从叶片相对叶绿素含量和净光合速率对缺铁胁迫的响应看,GD 对缺铁最为敏感,SD次之,而HD敏感性较低。
图3 缺铁对不同生态型杜梨幼苗相对叶绿素含量以及净光合速率的影响
Fig.3 Effects of iron deficiency on relative chlorophyll content and net photosynthetic rate of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
根尖是植物吸收矿质营养最活跃的部位,根尖数和根表面积的大小体现了根的吸收能力的强弱。由图4-A可以看出,随着供铁浓度降低,根尖数显著增加。在供铁浓度为40 μmol·L-1时,SD根尖数显著大于GD和HD,且GD和HD没有显著差异。当供铁浓度降为20 μmol·L-1时,SD和HD的根尖数均显著增加,GD无显著性变化。当供铁浓度降到0 μmol·L-1时,GD 和HD 显著增加,但此时SD 和HD 的根尖数显著大于GD,SD 和HD 之间无显著差异。与40 μmol·L-1相比,HD的根尖数增加32.4%,GD增加23.5%,SD增加29.1%,由图4-B可以看出,缺铁处理也使3种杜梨根表面积显著增加,供铁浓度0 μmol·L-1与40 μmol·L-1相比,HD的根表面积增加49.6%,GD增加24.1%,SD 增加37.7%,表明HD 在缺铁胁迫下根系生长能力最强,SD次之,GD最弱。
图4 缺铁对不同生态型杜梨幼苗根系生长的影响
Fig.4 Effects of iron deficiency on root growth of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
植物根系在吸收铁时,首先会酸化根际环境,将土壤中Fe3+变为可溶性Fe2+,同时通过Fe3+还原酶将Fe3+还原为Fe2+进行吸收。因此植物根际酸化能力越强和Fe3+还原酶活性越高,越有利于对Fe3+的吸收。由图5-A 可见,随着供铁浓度的降低,3 种杜梨幼苗的根际pH值逐渐降低,酸化能力逐渐增强。在供铁浓度为40 μmol·L-1时,3种杜梨的根际pH值没有显著差异。随着供铁浓度的降低,3种杜梨的根际酸化能力均显著增加,其中,在供铁浓度为0 μmol·L-1时,GD 的根际pH 值显著高于HD,与SD 差异不明显。说明GD 的根际酸化能力最弱,可能是其更不耐受缺铁的原因之一。为了解根系酸化能力与Fe3+还原酶活性的关系,进一步分析了不同处理Fe3+还原酶活性变化,结果如图5-B 所示。当供铁浓度为40 μmol·L-1时,3种杜梨之间无显著差异,随着铁浓度的降低,3种杜梨幼苗的Fe3+还原酶活性均显著提高。当供铁浓度为20 μmol·L-1时,HD的Fe3+还原酶活性显著大于SD 和GD,后二者之间无显著差异。当供铁浓度为0 μmol·L-1时,HD 的Fe3+还原酶活性显著大于GD,但与SD 差异不显著。与供铁浓度为40 μmol·L-1时相比,根系Fe3+还原酶活性提高程度为HD>SD>GD,与根际酸化能力表现了一致的变化。
图5 缺铁对不同生态型杜梨幼苗根际酸化能力和Fe3+还原酶活性的影响
Fig.5 Effects of iron deficiency on rhizosphere acidification and Fe3+reductase activity of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
铁在杜梨幼苗的根中含量最高,其次是老叶,茎和新叶相近。缺铁导致杜梨幼苗各器官的铁含量不均衡下降,尤以根、茎和新叶下降明显。如图6 所示,在供铁浓度为40 μmol·L-1时,根中的全铁含量HD 显著高于SD 和GD,后二者之间无显著差异。随着供铁浓度的降低,3 种杜梨根中的全铁含量均显著下降,以GD 下降幅度最大。根中活性铁含量表现了类似的变化趋势。GD茎中的全铁和活性铁的含量显著低于其他2 种杜梨,HD 高于SD。老叶中的全铁含量在供铁浓度为40 μmol·L-1时,3 种杜梨无显著差异,当供铁浓度降低到20 μmol·L-1时,HD 和GD 无显著变化,SD 老叶中的全铁含量显著降低,0 μmol·L-1时,3 种杜梨均进一步显著降低,HD 含量高于SD 和GD,后二者无显著差异。活性铁含量仅在0 μmol·L-1时,HD显著高于SD,但二者与GD差异不显著,其他两个处理3种杜梨间差异不显著。新叶在铁浓度为40 μmol·L-1时,SD全铁含量显著低于HD和GD,当供铁浓度降低到20 μmol·L-1时,HD 下降不明显,SD 和GD 均显著下降,当供铁浓度降低到0 μmol·L-1时,3种杜梨都较前一个处理表现了显著下降。但活性铁在2个缺铁处理中,3种杜梨都随供铁浓度下降而显著下降,GD 下降幅度最大。说明3 种生态型杜梨根对铁的吸收、贮备和输出能力不同,缺铁导致的新叶中活性铁含量变化与根中相似。
图6 缺铁对不同生态型杜梨幼苗各器官全铁和活性铁含量及分布的影响
Fig.6 Effects of iron deficiency on contents and distribution of total iron and active iron in organs of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
总体上,缺铁引起根和新叶中活性铁的下降幅度大于全铁,3种杜梨中,以GD下降幅度最大,其次SD,HD最小。
由于杜梨用作砧木时根系可作为一个功能的整体,为此,以单株根系为单位计算了缺铁对不同生态型杜梨幼苗根系全铁和活性铁积累量的影响。如图7所示,在不同供铁浓度下,SD和HD的单株根系全铁与活性铁积累量均显著大于GD,在供铁浓度为0 μmol·L-1时,SD 的根系全铁积累量显著大于HD,而SD的根系活性铁积累量与HD无显著差异。
图7 缺铁对不同生态型杜梨幼苗根系全铁和活性铁积累量的影响
Fig.7 Effects of iron deficiency on total iron and active iron accumulation in roots of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
缺铁引起杜梨幼苗各器官氮含量下降(图8-A~D)。根、老叶和新叶中氮元素含量受缺铁影响程度依次为:GD>HD>SD,茎中氮元素含量受缺铁的影响程度依次为:GD>SD>HD,由此可以看出GD 氮元素含量受缺铁的影响最大。由图8-E~H可以看出,缺铁对根中磷元素含量变化影响较小,除GD在供铁浓度为0 μmol·L-1时P元素含量呈现显著下降外,SD 和HD 无显著变化。3 种杜梨茎中磷元素含量受缺铁影响程度依次为:GD>HD>SD,老叶依次为:GD>SD>HD。新叶中SD 在供铁浓度为20 μmol·L-1时磷元素含量显著下降,而GD和HD无显著变化。由图8-I~L 可以看出,钾元素含量受缺铁影响程度根中以GD最大,SD次之,HD变化不显著。但随着供铁浓度降低,茎、老叶和新叶中钾元素含量表现了不同程度的增加,老叶中的增加幅度为SD>GD>HD,新叶中为GD>SD,HD 无显著变化。在供铁浓度由40 μmol·L-1降低为20 μmol·L-1时,HD老叶中钾元素含量无显著变化,受缺铁影响程度最小,供铁浓度由20 μmol·L-1降低为0 μmol·L-1时,3种杜梨老叶中钾元素含量均无显著变化。总体来看,缺铁对不同生态型的杜梨各器官中氮磷钾元素含量和分布影响是不同的,其中,缺铁对GD的影响最大,SD次之,HD最小。
图8 缺铁对不同生态型杜梨幼苗各器官氮、磷、钾元素含量及分布的影响
Fig.8 Effects of iron deficiency on contents and distribution of nitrogen,phosphorus and potassium in organs of different ecotypes of P.betulifolia seedlings
铁元素作为光合磷酸化和氧化磷酸化中铁硫蛋白的重要组成元素,参与了植物的光合和呼吸作用等代谢过程,对植物的生长发育起着重要的作用[25-26]。结果表明,缺铁会导致杜梨幼苗的株高、茎粗和干质量下降,其中地上部干质量下降幅度大于根部,说明缺铁对地上部生长的影响大于地下部,本身生长量越大,受影响的程度越大,并与缺铁引起的叶绿素含量和净光合速率下降表现相一致。有研究结果表明地下部与地上部生长状态可能与生长素和细胞分裂素的合成与分布有关[27-28],但这与缺铁之间的联系还不明确。根尖是根系吸收养分最活跃的部位,植物在缺铁条件下通过增加根尖数和根表面积来提高获取铁元素的效率[29]。本研究表明随着供铁浓度降低,3 种不同生态型的杜梨根尖数和根表面积均显著增大,其中HD 根系生长能力最强,GD 最弱,表现与各处理叶片黄化程度相一致。3 种不同生态型杜梨之间的生长量不同,HD与GD的生长量相近,SD 的生长量最大,根中全铁和活性铁积累量最高,因此SD表现不耐缺铁的部分原因可能与其生长量大、需要更多的铁元素有关。当SD用作为砧木时,对接穗的铁营养供应能力可能并不一定低于HD,所以还需进一步通过砧木嫁接试验来评价其在新的嫁接复合体中对铁元素的吸收和向上供应的能力。
一般情况下,土壤中铁元素主要以生物有效性低的Fe3+形式存在,尤其是在较高的pH和碳酸盐含量的土壤中,铁的溶解度严重降低[30],杜梨作为双子叶植物,主要运用策略Ⅰ[31]来进行铁元素的转运吸收。因此在吸收环境中的铁元素时,首先通过根尖分泌质子和有机酸,利用Fe3+还原酶将Fe3+还原成Fe2+,然后转运到地上部[32-33]。当出现缺铁逆境时,根际酸化能力和Fe3+还原酶活性等生理响应程度可作为衡量植物耐缺铁能力的重要依据[34],在根际酸化能力和Fe3+还原酶活性,HD 表现最强,这也可能是相同条件下黄化程度轻的原因之一。活性铁和全铁含量可以直接反映树体对缺铁响应能力的大小[35-36],缺铁会引起根、茎、叶各器官中的活性铁和全铁含量不均衡的降低,笔者在本研究中发现HD 根和茎的全铁含量和活性铁含量均要显著高于SD和GD,表明HD 对铁的吸收和运输能力均强于SD 和GD。综合考虑,3种不同生态型的杜梨对铁缺乏的生理响应能力为HD>SD>GD。
植株缺铁时,还会影响氮、磷、钾和其他矿质元素的吸收[37-39],氮素是果树必需的大量营养元素之一,果树缺氮会造成叶片失绿,净光合能力下降,影响果实质量和产量[40],本研究结果表明杜梨幼苗各器官的氮、铁元素含量具有协同作用,氮元素含量会随着活性铁和全铁含量的下降而下降,其中SD 根部的氮吸收和叶的氮代谢利用能力及HD茎的氮运输能力受缺铁影响较小。磷与碳水化合物和脂肪蛋白质的合成、转运有关,缺磷影响地上部的生长,导致叶片疏小,叶色褐黄至紫色[41]。笔者在本研究中发现缺铁会降低植株对磷元素的吸收,进而加重缺铁对植株的不利影响,磷元素含量受缺铁影响最大的是SD,GD次之,HD最小。钾元素参与了植物体内多种酶的活化及渗透调节[42-43],缺铁会引起杜梨茎和叶中钾元素含量出现不同程度的增加,这种现象在番茄中也有类似的报道[44],但不同生态型的杜梨各组织器官受影响的程度不同,因此,铁和其他矿质营养元素之间协同作用的差异可能也是其耐缺铁性不同的原因之一。
不同生态型杜梨缺铁胁迫生理响应及耐缺铁性存在较大差异,缺铁条件下甘肃杜梨的叶片黄化程度最高,山东杜梨次之,河南杜梨最低,缺铁使叶片净光合能力下降程度最大的是甘肃杜梨,河南杜梨的根际酸化能力和Fe3+还原酶活性最高,根系生长能力最强,活性铁和全铁含量最高,对氮、磷、钾元素的吸收影响最小,根部活性铁和全铁积累量以山东杜梨最高,不同生态型杜梨对缺铁胁迫生理响应敏感性不同,综合不同生态型杜梨本身生长势及对缺铁的响应,认为河南杜梨和山东杜梨的耐缺铁性优于甘肃杜梨。
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Physiological response to iron deficiency stress and evaluation of tolerance to iron deficiency of different ecotypes of Pyrus betulifolia